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四川温江公园苔藓植物多样性及微生境调查研究

伍青, 卢子豪, 李春浓, 蒋伟, 周亚辉, 高素萍, 周永红, 余小芳

伍青, 卢子豪, 李春浓, 等. 四川温江公园苔藓植物多样性及微生境调查研究[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2019, 34(3): 458-465. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201712041
引用本文: 伍青, 卢子豪, 李春浓, 等. 四川温江公园苔藓植物多样性及微生境调查研究[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2019, 34(3): 458-465. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201712041
Qing WU, Zihao LU, Chunnong LI, et al. Research on the Bryophytes’ Diversity and Microhabitat in Wenjiang Park of Sichuan Province[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2019, 34(3): 458-465. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201712041
Citation: Qing WU, Zihao LU, Chunnong LI, et al. Research on the Bryophytes’ Diversity and Microhabitat in Wenjiang Park of Sichuan Province[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2019, 34(3): 458-465. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201712041

四川温江公园苔藓植物多样性及微生境调查研究

基金项目: 广东省科技计划项目(20170907)
详细信息
    作者简介:

    伍青(1996—),女,四川德阳人,学士,主要从事园林植物研究。E-mail:313270633@qq.com

    通信作者:

    余小芳(1982—),女,四川德阳人,博士,副教授,主要从事园林植物生态应用研究。E-mail:xiaofangyu@sicau.edu.cn

摘要:
目的研究四川温江公园苔藓植物的多样性及其生长的微生境特征,并对不同基质的理化性质进行定量研究,以期比较该地区苔藓植物生长环境的差异,为城市苔藓植物的多样性和微生境研究提供参考。
方法采用典型样方调查法,对样方内苔藓植物的多样性、7种微生境的环境特征、基质理化性质进行测定。
结果研究区域内苔藓植物共13科18属19种。土生种类最多,石生种类次之,树生种类最少;优势科为丛藓科(Pottiaceae)、羽藓科(Thuidaceae),优势种为大羽藓(Thuidium cymbifolium)、密枝细羽藓(Cryto-hypnum tamariscellum)、葫芦藓(Funaria hygrometrica)和大灰藓(Hypnum plumaeforme);7种微生境下苔藓植物的盖度依岩石、疏林草坪、溪边湿地、林地、灌木草坪、草坪和树附生次序降低,物种的丰富度为:岩石 > 溪边湿地=树附生 > 林地 > 疏林草坪=灌木草坪 > 草坪;疏林草坪、溪边湿地、林地、灌木草坪营养元素含量较高,草坪微量元素Fe、Mn、Cu和Zn含量高,岩石交换性Ca、Mg含量高,树附生基质理化性质较稳定。
结论四川温江公园苔藓种类丰富,土生、石生藓种类突出。在苔藓生长的微生境中,除坡度、光照、凋落物厚度和人为干扰等影响因子外,基质的理化性质也是影响苔藓生长情况的决定因素。综上所述,岩石、溪边湿地、林地、疏林草坪利于苔藓生长。

 

Research on the Bryophytes’ Diversity and Microhabitat in Wenjiang Park of Sichuan Province

Abstract:
PurposeThis research focused on the diversity and microhabitat characteristics of bryophytes in Wenjiang Park in Sichuan Province. In order to compare the differences in the growth environment of bryophytes in the area, the physical and chemical properties of different matrices were studied quantitatively. This research could provide a reference for the study of the diversity and microhabitat of bryophytes in other urban areas.
MethodsThe diversity, microhabitat characteristics of 7 types and soil physicochemical properties of bryophytes were measured and investigated by means of typical sampling plot methods.
ResultsThere are 13 families, 18 genera and 19 species in this area, and the autochthonous species is dominated, followed by lithophytes and epiphytic. The dominant bryophytes families are Pottiaceae, Thuidiaceae, and the dominant species are Thuidium cymbifolium, Cryto-hypnum tamariscellum, Funaria hygrometrica and Hypnum plumaeforme. The rank of species cover degree is rock, open forest lawn, wetland, forest land, scrubland, lawn and epiphytic, and the rank of species richness is rock, wetland, epiphytic, forest land, open forest lawn, scrubland and lawn. The soil nutrient elements of open forest lawn, wetland, forest land and scrubland were high, however, trace elements of Fe, Mn, Cu and Zn were high in lawn, exchangeable Ca and Mg were high in rock, and the physicochemical properties of epiphytic were stable.
ConclusionsThe bryophytes of Wenjiang Park in Sichuan are various, and the types of autochthonous bryophytes and lithophytes are in higher proportion. In addition to the environmental factors of slope, illumination, litter thickness and human disturbance of microhabitats, the substrates physicochemical property is also the decisive factor affecting the growth and quality of the bryophytes. Above all, bryophytes in wetland, rock, forest land, open forest lawn grows well.

 

  • 细胞程序性死亡(programmed cell death, PCD)是一种由基因控制的细胞自主而有序的死亡行为,其过程受细胞内外多种信号系统的诱导,并受细胞内部多种信号转导因子级联反应的调控[1-2]。Ca2+是真核细胞信号转导的核心组分之一,在细胞PCD过程中具有诱导、启动和调节等十分重要的作用[3-10]。目前有关Ca2+与植物PCD的相关研究发现,Ca2+作为第二信使调控着植物PCD的信号转导过程[11]。一些外界信号,如IAA、Eth、CTK等第一信使经其受体进行一系列跨膜信号转换后,调节Ca2+的分布以及在特定部位含量瞬间变化而产生细胞内Ca2+信号,Ca2+信号再调节或激活其他PCD相关因子,进而影响着细胞PCD过程中一系列的生理生化反应以致形态学的变化[8, 11]。显然,在植物PCD过程中,细胞内Ca2+的分布与转移即“时空性” 是形成Ca2+信号的基础[2, 12]

    为解析Ca2+信号对植物不同部位PCD过程的调控关系,人们分别对不同植物的不同器官、组织PCD过程中的Ca2+分布的时空变化进行了较多的研究[7-8, 13-14],但至今未见有关木本植物芽体PCD过程中Ca2+分布的时空变化研究。我们首次发现:替码板栗枝条上的前段芽体可发生PCD导致枝条前段自然衰亡,使其树体在栽培上具有自然控冠、修剪省工的独特优势,并将替码板栗芽体PCD过程划分为5个特征明显时期(S1~S5),前4个时期(S1~S4)芽体组织内Ca2+浓度高于非替码板栗[1],说明Ca2+参与替码板栗芽体PCD过程。但是,Ca2+在替码板栗芽体内部分布的时空动态变化及其对PCD过程的调节关系未知。因此,在已有研究的基础上,我们在替码板栗芽体发生PCD时期,利用焦锑酸盐沉淀技术在芽体细胞超微结构水平上研究Ca2+分布的时空变化,对比同期Ca2+在非替码板栗芽体内的分布差异,探讨Ca2+信号与芽体PCD过程间的关系,以期揭示替码板栗芽体完整的PCD信号转导途径及胞内级联反应,为人为调控板栗芽体PCD提供理论依据。

    试验地位于河北省农林科学院昌黎果树研究所板栗种质资源圃,栗园土质为砾质沙壤土,株行距4 m×4 m,常规管理水平。选用树龄均为10年生的树体健壮、生长正常、无病虫害的替码板栗品种X12和非替码板栗品种大板红为试验对象,每株树分东南西北4个方向随机采集树冠外围结果枝上部芽体50个作为1个试验样品,5次重复,样品釆集按照雄花脱落后20 d (S1时期)、25 d (S2时期)、30 d (S3时期)、35 d (S4时期)、40 d (S5时期) 5个时期进行[15]

    按照焦锑酸钾沉淀法制样[14]。样品在Leica EM-UC6超薄切片机上用钻石刀切片,切片厚度为70 nm,不染色,采用透射电镜(日立,H-7 500)观察,CCD数码相机(Gatan 832)拍照。

    每种材料的超微定位至少观察10个视野,选取典型区域进行拍照。对照样品的切片置于100 mmol/L (pH 7.8)的EGTA中37 °C孵育2 h,然后观察拍照。

    S1时期,替码板栗X12和非替码板栗大板红芽体细胞骨架结构正常,细胞壁清晰;质膜结构完整;细胞核结构完整,核膜双膜结构明显,核仁清晰;液泡膜结构完整,清晰(图1a、b图2a)。

    图  1  替码板栗X12 S1~S5时期内芽体细胞Ca2+的分布
    注:a)~l)中的黑色颗粒(箭头所示)是显示Ca2+存在的焦锑酸钙沉淀;a) S1时期:Ca2+主要分布在细胞间隙和细胞壁处,液泡膜附近有较多Ca2+分布,细胞质和细胞核内有少量Ca2+颗粒,液泡内没有Ca2+颗粒;b) S1时期:内质网上有较多Ca2+;c) S2时期:细胞间隙中的Ca2+分布较少,较少Ca2+颗粒沿着细胞壁排列,细胞质中分布着较多Ca2+,沿着核膜分布着整齐的1圈Ca2+颗粒,细胞核内有少量Ca2+分布;d) S2时期:液泡膜附近,及解体的液泡内有大量Ca2+的分布;e) S3时期:细胞间隙和细胞壁上Ca2+颗粒较少,细胞质中的Ca2+分布很多;f) S3时期:质膜和胞间连丝处有大量Ca2+颗粒,液泡膜和细胞核膜附近有大量的Ca2+;g) S4时期:细胞壁上无Ca2+颗粒;h) S4时期:Ca2+呈无规则分布,主要集中在液泡碎片处;i)、j) S5时期:Ca2+随降解的细胞器碎片成块状聚集;k)、l):切片经EGTA处理后,箭头所示Ca2+被螯合后的空洞,Ca2+沉淀颗粒被消除。N.细胞核;Nu. 核仁;Cw. 细胞壁;Re. 内质网;Pm. 质膜;Vm. 液泡膜;V. 液泡。
    Figure  1.  Ca2+ distribution of the buds cell at five stage of apical-bud-senescence chestnut X12
    Note: The black particles (arrowhead) in a)-j) are the calcium antimonite precipitate which shows calcium’s distribution. a) during the S1 period: there were a great amount of calcium particles in the intercellular space or on the cell wall, some calcium particles near the tonoplast, less calcium particles in the cytoplasm and the nucleus, no calcium particles in the vacuole; b) during the S1 period: many calcium particles on the endoplasmic reticulum; c) during the S2 period: Less calcium particles in the intercellular space, less calcium particles were arranged along the cell wall,many calcium particles in the cytoplasm, a neat circle of calcium particles is distributed along the nuclear membrane, less calcium particles in the nuclear; d) during the S2 period: many calcium particles near the tonoplast, and in the disassembled vacuole; e) during the S3 period: less calcium particles in the intercellular space or on the cell, and more in the cytoplasm; f) during the S3 period: there were a great amount of calcium particles on the plasma membrane and the plasmodesmata, and many calcium particles near the tonoplast and nuclear membrane; g) during the S4 period: there were almost no calcium particles on the cell wall; h) during the S4 period: calcium particles were randomly distributed at the vacuole debris; i) and j) during the S5 period: dalcium particles aggregated with degraded organelle fragments; k) and l) after the slices were treated with EGTA, the arrows showed the cavity of calcium sequestered by EGTA and the calcium precipitate particles were eliminated. N. nucleus; Nu. nucleolus; Cw. cell wall; Re. endoplasmic reticulum;Pm. plasmalemma; Vm. tonoplast; V. vacuole.
    图  2  非替码板栗大板红S1~S5时期内芽体Ca2+的分布
    注:a) S1时期:Ca2+主要分布在细胞壁上,沿着细胞壁紧密整齐地排列1圈;b) S2时期:细胞间隙中有很多Ca2+呈黑色小颗粒状分散存在;c) S3时期:内质网上有很多Ca2+颗粒分布,细胞核内有少量Ca2+颗粒分布;d) S4时期:细胞质内存在少量Ca2+颗粒;e) S5时期:液泡内几乎检测不到Ca2+存在。N. 细胞核;Nu. 核仁;Cw. 细胞壁;Re. 内质网;Pm. 质膜;Vm. 液泡膜;V. 液泡 ;Chl. 叶绿体
    Figure  2.  Ca2+ distribution of the buds cell at five stage of no-replaceable bud chestnut Dabanhong
    Note: a) during the S1 period: there were a great amount of calcium particles were arranged along the cell wall; b) during the S2 period: there were a great amount of calcium particles were small and scattered within the intercellular space; c) during the S3 period: many calcium particles on the endoplasmic reticulum, and less in the nucleus; d) during the S4 period: there were a few of calcium particles in the cytoplasm; e) during the S5 period: there was almost no calcium particles in the vacuole. N. nucleus;Nu. nucleolus; Cw. cell wall; Re. endoplasmic reticulum; Pm. plasmalemma; Vm. tonoplast; V. vacuole; Chl. chloroplast

    这一时期,替码板栗X12和非替码板栗大板红的Ca2+分布差异不大,Ca2+均主要分布在细胞间隙和细胞壁处。Ca2+呈黑色小颗粒状分散存在于细胞间隙中,或沿着细胞壁紧密整齐地排列一圈;内质网上也均有较多Ca2+颗粒分布;质膜和液泡膜附近也有较多Ca2+分布,但质膜附近Ca2+沉淀颗粒比液泡膜附近多;另外,细胞质和细胞核内也有少量Ca2+颗粒均匀存在;液泡内几乎检测不到Ca2+存在(图1a、b图2a)。

    将样品用Ca2+的专一性螯合剂EGTA处理后在透射电镜下观察,发现应该有焦锑酸钙沉淀颗粒的部位变成空洞(图1k、l),这说明Ca2+沉淀颗粒被消除,本研究中Ca2+的定位是可靠的。

    S2时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构正常(图2b),替码板栗X12芽体细胞的细胞壁清晰,质膜结构完整,但液泡和细胞核变化较为明显,其中,液泡体积变大,个别液泡膜部分位置破裂变得不完整;细胞核体积变小,核仁变模糊(图1c、d)。

    与S1时期相比,非替码板栗大板红的Ca2+分布没有明显变化(图2b)。替码板栗X12 芽体细胞内质网上Ca2+的分布变化不明显,但其他部位Ca2+的分布发生了变化:细胞间隙中的Ca2+分布减少,Ca2+沉淀颗粒仅沿着细胞壁排列;细胞质中Ca2+分布开始增多,在细胞质膜附近均匀分布着较多Ca2+沉淀颗粒;液泡膜附近开始出现大量Ca2+沉淀颗粒,部分解体的液泡内有大量Ca2+的分布;细胞核膜附近Ca2+颗粒也增加,沿着核膜分布着整齐的1圈Ca2+沉淀颗粒,细胞核内也有少量Ca2+分布(图1c、d)。

    S3时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构仍保持正常(图2c),而替码板栗X12细胞结构进一步解体,细胞形状变得不规则,部分细胞壁出现断裂;液泡数量增多,液泡膜边界变得模糊,而且大部分液泡膜破裂;细胞核降解严重,细胞出现质壁分离现象(图1e、f)。

    这一时期,非替码板栗大板红的Ca2+分布没有明显变化,仍然主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上。而替码板栗X12 Ca2+的分布发生了比较明显的变化:细胞间隙中Ca2+变得极少,Ca2+沉淀颗粒分布比较分散;细胞壁上Ca2+颗粒也明显减少;质膜和胞间连丝处则积累大量Ca2+颗粒;细胞质中的Ca2+分布明显增多;破裂的液泡内和液泡周围Ca2+颗粒也明显增多,呈小颗粒状分散分布;细胞核膜附近也积累了大量的Ca2+,呈小颗粒状或针状分布,并且密度较大;细胞核内Ca2+沉淀颗粒也明显增多,并呈均匀分布(图1e、f)。

    S4时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构仍没有任何降解迹象(图2d),而替码板栗X12细胞结构则进一步解体:细胞骨架降解无法维持完整的结构,细胞壁多处出现断裂,液泡完全降解,细胞核进一步解体,由膜包被形成明显凋亡团粒,此时细胞内细胞器降解破碎,碎片浓缩于细胞中形成个数大小不等的团粒(图1g、h)。

    与S3时期相比,非替码板栗大板红的Ca2+分布依旧没有明显变化(图2d),而替码板栗X12的Ca2+黑色沉淀颗粒在细胞内呈无规则分布,质膜和细胞壁上分布较少,几乎集中于破碎的液泡膜和液泡碎片处,个别Ca2+成团粒状积累(图1g、h)。

    S5时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构仍保持正常,几乎没有变化,Ca2+仍然主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上,细胞质和细胞核中Ca2+依旧分布很少,液泡中仍检测不到Ca2+的存在(图2e)。而替码板栗X12此时细胞已经死亡,细胞骨架降解或变形严重,细胞壁萎缩,液泡、细胞核和其他细胞器已经不完整存在,均降解破碎,Ca2+随降解的细胞器碎片成块状聚集(图1i、j)。

    Ca2+作为第二信使实现信号传递的过程是通过精确控制细胞质Ca2+的时间、空间和浓度参数的变化来实现的,显然细胞内Ca2+的分布与转移是形成Ca2+信号的基础[16]。在植物细胞中,细胞间隙和细胞壁是胞外Ca2+库,液泡、内质网和线粒体等细胞器是胞内Ca2+库,在植物细胞基质中游离Ca2+水平很低,Ca2+主要储存在胞外和胞内钙库中,当细胞受到外界生物或非生物刺激时,引起细胞内钙库Ca2+的释放或胞外Ca2+内流,造成细胞质基质内Ca2+水平的迅速升高,形成Ca2+信号,从而引起细胞体内的一系列级联反应,引发一系列生理生化过程,从而起到传递胞外信号的作用[5, 17]。辣椒叶片导管分子细胞程序性死亡(PCD)过程中细胞质中增加的Ca2+来自于胞外钙库(细胞壁和细胞间隙)[13];毛竹茎秆纤维细胞PCD过程中细胞质中Ca2+浓度的增加主要来自于胞内钙库(液泡)[14]。本研究中,Ca2+亚细胞定位发现:对照的非替码板栗大板红在S1~S5时期,细胞内Ca2+的时空变化不明显,Ca2+一直主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上;而在替码板栗X12芽体PCD过程中细胞内Ca2+空间和浓度发生明显变化,S1时期Ca2+主要分布在细胞壁和细胞间隙处,S2时期细胞壁和细胞间隙中的Ca2+颗粒减少,细胞质、液泡和细胞核中的Ca2+颗粒明显增加,S3时期细胞质中的Ca2+颗粒达到了最高值,这说明替码板栗X12芽体PCD过程中激素等第一信使引起了细胞内Ca2+的重新分布和浓度发生变化,即形成了细胞钙信号,而这种钙信号来源可能主要来自胞外钙库(细胞壁和细胞间隙)。这与辣椒导管分子PCD的相关研究结果[13]一致。另外,本研究发现非替码板栗大板红在S1~S3时期,Ca2+除了一直主要分布在细胞壁、细胞间隙上外,内质网上也一直分布较多,说明在非替码板栗大板红芽体中,内质网可能是胞内钙库,但是替码板栗X12在S1~S2时期内质网上的Ca2+时空变化不明显,所以还不能确定替码板栗X12芽体PCD过程中Ca2+信号形成的来源也包括胞内钙库(内质网),有关这方面的结果还需要进一步研究验证。

    植物PCD过程受细胞内外多种信号系统的诱导和调控[2, 5],而Ca2+在整个PCD信号转导过程中起着接收和传递信号的作用,而且钙信使系统起作用的中心环节是细胞中Ca2+的空间和浓度的变化[8, 15, 18]。前人研究表明:细胞质内增加的Ca2+激活了一系列用于细胞质和细胞核降解的钙依赖性水解酶活性,从而引发了细胞的PCD。另外还可以激活核膜上ATP依赖的Ca2+摄取系统,升高细胞核的Ca2+浓度,并导致核酸内切酶的活化和DNA的断裂[19-20]。GROOVER等[21]研究认为:Ca2+的胞质内流导致液泡膜解体和细胞质流动停止,进而启动了细胞死亡,然后解体的液泡和细胞质混合而引起了细胞的原位自溶。本试验中,替码板栗X12芽体细胞内Ca2+空间和浓度发生的动态变化与芽体细胞PCD发生相对应。S1时期,Ca2+主要分布在细胞壁和细胞间隙处,此时细胞骨架结构正常,细胞器完整;S2时期,细胞间隙中Ca2+减少,细胞质、液泡膜和细胞核膜附近Ca2+开始增多,此时部分液泡轻微破裂;S3时期,细胞间隙和细胞壁上Ca2+颗粒极少,细胞质、细胞核、破裂的液泡内及液泡周围Ca2+明显增多,而此时细胞进一步解体,细胞壁、液泡、细胞核降解严重,而且DNA降解严重[22];S4时期,细胞解体严重,Ca2+在质膜和细胞壁上分布较少,主要集中于破碎的液泡膜和液泡碎片处,此时芽体DNA降解片段形成了模糊的弥散带[22];S5时期,细胞死亡,细胞骨架降解或变形严重,细胞壁萎缩,液泡、细胞核和其他细胞器已经不完整存在,均降解破碎,Ca2+随降解的细胞器碎片聚集在团粒处,此时电泳已经检测不到芽体DNA的存在[22]。而对照品种大板红在S1~S5时期,Ca2+一直主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上,细胞骨架结构一直保持正常,而且芽体DNA一直未发生降解现象[22]。以上结果说明:Ca2+从细胞壁和细胞间隙向细胞质内、液泡和细胞核附近及内部转移引起替码板栗芽体PCD,Ca2+的时空变化与芽体PCD有密切关系。笔者推测,细胞质、液泡和细胞核内Ca2+的增加可能首先直接或间接导致了液泡的破裂,之后引起DNA降解及细胞骨架的解体。但Ca2+内流到细胞后到底是激活了何种促使液泡膜破裂的蛋白酶导致液泡破裂以及液泡内释放了何种PCD执行阶段的相关酶降解细胞仍未可知,有关这方面的问题有待进一步细化研究。

  • 图  1   有效铁、锰、铜、锌含量及交换性钙、镁在不同微生境基质类型中含量的变化

    注:不同微生境类型下差异的显著性由不同小写字母表示(P<0.05)。

    Figure  1.   Changes of available Fe, Mn, Cu, Zn and exchangeable Ca, Mg contents in substrates under different microhabitates

    Note: Different lowercase letters indicate the significance of differences in different microhabitat types (P<0.05).

    表  1   四川温江公园苔藓植物名录

    Table  1   The bryophytes list of Wenjiang Park

    序号 No.种名species科family属genus
    1羽枝青藓Brachythecium plumosum青藓科 Brachytheciacea青藓属 Brachythecium
    2密枝细羽藓Cryto-hypnum tamariscellum羽藓科 Thuidiaceae细羽藓属 Cyrto-hypnum
    3曲尾藓Dicranum scoparium曲尾藓科 Dicranaceae曲尾藓属 Dicranum
    4软枝绿锯藓Duthiella flaccida扭叶藓科 Trachypodaceae绿锯藓属 Duthiella
    5绢藓Entodon cladorrhizans绢藓科 Entodontaceae绢藓属 Entodon
    6细绢藓Entodon giraldii绢藓科 Entodontaceae绢藓属 Entodon
    7葫芦藓Funaria hygrometrica葫芦藓科 Funariaceae葫芦藓属 Funaria
    8狭叶小羽藓Haplocladium angustifolium羽藓科 Thuidiaceae小羽藓属 Haplocladium
    9大灰藓Hypnum plumaeforme灰藓科 Hypnaceae灰藓属 Hypnum
    10四川湿地藓Hyophila setschwanica丛藓科 Pottiaceae湿地藓属 Hyophila
    11南亚白发藓Leucobryum humillimum白发藓科 Leucobryaceae白发藓属 Leucobryum
    12新丝藓Neodicladiella pendula蔓藓科 Meteoriaceae新丝藓属 Neodicladiella
    13红蒴立碗藓Physomitrium eurystomum葫芦藓科 Funariaceae立碗藓属 Physomitrium
    14金发藓Polytrichum commune金发藓科 Polytrichaceae金发藓属 Polytrichum
    15反纽藓Timmlella anomala丛藓科 Pottiaceae反纽藓属 Timmlella
    16泛生墙藓Tortula muralis丛藓科 Pottiaceae墙藓属 Tortula
    17大羽藓Thuidium cymbifolium羽藓科 Thuidiaceae羽藓属 Thuidium
    18地钱Marchantia polymorpha地钱科 Marchantiaceae地钱属 Marchantia
    19石地钱Reboulia hemisphaerica疣冠苔科 Aytoniaceae石地钱属 Reboulia
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    表  2   四川温江公园苔藓植物优势科

    Table  2   Dominant families of bryophytes of Wenjiang Park

    序号
    No.
    科名
    family name
    属数
    number of genera
    占总属数的百分比/%
    proportion
    种数
    number of species
    占总种数的百分比/%
    proportion
    1羽藓科Thuidiaceae316.67315.79
    2丛藓科Pottiaceae316.67315.79
    3葫芦藓科Funariaceae211.11210.53
    4绢藓科Entodontaceae1 5.56210.53
    合计 total4科 four families950.0010 52.63
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    表  3  

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    Table  3  

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    序号
    No.
    种名
    species
    样点占有数
    number of sampling
    占总样点
    百分比/%
    proportion
    1大羽藓Thuidium cymbifolium2430.77
    2密枝细羽藓Cryto-hypnum tamariscellum2025.64
    3葫芦藓Funaria hygrometrica1823.08
    4大灰藓Hypnum plumaeforme1620.51
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    表  4   四川温江公园苔藓植物生态分布类型

    Table  4   List of ecological distribution types of Wenjiang Park

    序号
    No.
    生态类型
    ecotype
    苔类植物
    liverworts
    藓类植物
    mosses
    占总种类数百分率/%
    proportion
    1土生 autochthonism21168.42
    2岩石生 lithophytes01263.16
    3树附生epiphytic0 631.58
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    表  5   不同类型微生境下参数变化

    Table  5   The different parameters in different microhabitat types

    生境类型
    microhabitat
    types
    坡度/°
    slope
    光照
    illumination
    凋落物厚度/mm
    litter
    thickness
    盖度
    coverage
    郁闭度
    canopy
    density
    人为干扰
    human
    disturbance
    伴生种
    accompanying
    species
    苔藓种类
    number of
    species
    溪边湿地
    wetland
    10~25散射光
    scattered light
    0.15165/2890.43行人
    pedestrian
    碧桃Amygdalus persica、黄葛树Ficus virens、黄金菊Hypochaeris ciliata、狗牙根Cynodon dactylon、麦冬Ophiopogon japonicus6
    草坪
    lawn
    0直射光
    direct light
    0 100/2890.40踩压
    tread
    麦冬Ophiopogon japonicus、木樨Osmanthus fragrans2
    灌木草坪
    scrubland
    0~3散射光
    scattered light
    0.20120/2890.80南天竹Nandina domestica、杜鹃Rhododendron simsii、琴丝竹Bambusa multiplex3
    疏林草坪
    forest lawn
    5~10散射光
    scattered light
    0.10180/2890.40停车场
    parking
    天竺桂Cinnamomum japonicum、垂柳Salix babylonica、梅Armeniaca mume、银杏Ginkgo biloba3
    林地
    forest
    20~50散射光
    scattered light
    0.35130/2890.55水杉Metasequoia glyptostroboides、法国冬青Viburnum odoratissimum、麦冬Ophiopogon japonicus4
    岩石
    rock
    散射光
    scattered light
    0 236/2890.65山茶Camellia japonica、黄葛树Ficus virens12
    树附生
    epiphytic
    散射光
    scattered light
    0 50/2890.45麦冬Ophiopogon japonicus6
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    表  6   不同微生境类型下基质基本理化性质变化

    Table  6   Change of soil physical and chemical properties of different microhabitat types

    生境类型
    microhabitat types
    wpH
    全氮/(mg·kg−1)
    total nitrogen
    有效磷/(mg·kg−1)
    available phosphorus
    速效钾/(g·kg−1)
    available potassium
    有机质/(g·kg−1)
    organic matter
    碱解氮/(mg·kg−1)
    available nitrogen
    溪边湿地wetland1.42 a60.45 a55 a36.4 ab42 a 6.60
    草坪lawn0.98 c40.38 b32 c22.6 c34 b 6.85
    灌木草坪scrubland1.20 b42.33 b 38 bc25.9 bc38 ab6.75
    疏林草坪forest lawn1.10 bc42.55 b 40 bc29.0 bc40 ab6.66
    林地forest1.59 a45.23 b 48 ab40.3 a38 ab6.32
    岩石rock0.25 d15.78 c12 d20.1 c10 c 7.58
    树附生epiphytic1.10 bc38.46 b35 c25.2 c35 ab4.89
    注:不同微生境类型下差异的显著性由数字后不同小写字母表示(P<0.05)。
    Note: The significance of differences in different microhabitat types by different lowercase letters after the number indicate (P<0.05).
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图(1)  /  表(6)
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出版历程
  • 通信作者:  余小芳 xiaofangyu@sicau.edu.cn
  • 收稿日期:  2017-12-25
  • 修回日期:  2018-06-07
  • 网络首发日期:  2019-04-30

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