丛枝菌根真菌对枸杞生长及抗根腐病的影响
Effects of Arbuscular Mycorrhizal on the Growth of Lycium barbarum and Its Resistance to Root Rot
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黑井地区弃渣场位于云南省楚雄彝族自治州禄丰市黑井镇,是云南省最大的产盐区,也是中国砂盐的重要产地。该地区地层富含石膏、芒硝、氯盐等风化物,由于铁路建设,黑井地区弃渣场完全暴露于地表,表层渣土已风化开裂甚至成粉末状,加上水分大量蒸发,渣场表层已经析出一层白色的盐结晶。随后该地进行了耕作土回填,土壤发生次生盐渍化,土壤板结、水资源匮乏和缺少适生作物/植物品种严重影响了该区域的生态环境[1]。采用合理的盐渍土壤治理措施,改善其理化性状和生物学特性,对耕地资源扩展、生态系统建设、区域化高质量发展具有重要的现实意义。
在理论方面,王遵亲等[2]对盐渍土进行了定义和系统的分类。在治理方面,土壤盐渍化治理措施包括灌排措施、物理调节、化学改良和生物措施。物理调控措施的机理相对明确,操作性较强[3],其措施主要有秸秆深埋、地膜覆盖、耕作保墒、深耕施肥、平整土地等[4-6]。秸秆深埋是通过在耕层以下铺设隔层,减少因蒸发作用的水分上移,阻止深层土壤盐分向耕层运移[7-9]。本研究选取紫茎泽兰、剑麻和小麦秸秆作为土壤隔盐材料,以黑井镇骄子山隧道弃渣场的土壤为研究对象开展室内土柱试验,研究不同隔盐材料处理下土壤水盐的分布规律,以期为改良土壤质地、改善土壤盐渍化和区域生态修复提供科学指导。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
将昆明当地收割晾干的小麦秆剪裁为0.5~1.0 cm,将云南农业大学后山收割的紫茎泽兰的茎晾干并剪裁至0.5~1.0 cm,将从昆明周边县城农村采摘的剑麻按50%腐烂、50%半腐烂剪裁为0.8~1.2 cm,三者即为供试秸秆。
试验土壤采自骄子山隧道弃渣场,自然风干,经粉碎后过2 mm孔径的试验筛备用。供试盐渍土中,黏粒[ 直径(d)≤0.005 mm]占5.00%,粉粒(0.005 mm<d≤0.075 mm) 占14.74%,砂粒(0.075 mm<d≤2 mm) 占35.18%,砾粒(2 mm<d≤60 mm)占45.08%,属于粉土质砾。根据TB 10012—2019《铁路工程地质勘察规范》[10],骄子山隧道弃渣场采样土壤含盐量为35 g/kg,属于强盐渍土。对照组土壤取自云南省昆明市云南农业大学后山,土体呈棕红色,土质均匀,为红黏土。土样经风干、碾碎过2 mm筛,进行常规土力学试验。根据GB/T 50123—2019《土工试验方法标准》[11]进行相关基础试验,测得土样基本物理性质见表1。
表 1 供试土样基本物理性质Table 1. Basic physical properties of test soil土样分类
soil sample classification天然含水率/%
natural moisture content天然密度/(g·cm−3)
natural density液限/%
liquid limit塑限/%
plastic limit最优含水率/%
optimal moisture content最大干密度/(g·cm−3)
maximum dry density盐渍土 saline soil 12.21 1.39 25.90 18.70 17.49 1.74 红黏土 red clay 20.10 1.13 31.40 21.50 28.20 1.42 1.2 试验设计与方法
1.2.1 试验设计
试验装置(图1)为底部密封但设有通气孔的有机玻璃圆柱(内径10.0 cm,高50.0 cm,壁厚0.3 cm),自下而上依次分为盐岩层、隔盐层和耕作层3层填装。盐岩层为厚度15 cm的盐渍土压实;隔盐层分别用厚度为10 cm的紫茎泽兰(F1)、剑麻(X1)、小麦(D1)秸秆填充作为隔盐材料,对照(CK)用厚度为10 cm的红黏土填充,共计4个处理;耕作层以厚度为20 cm的红黏土覆盖。
1.2.2 试验方法
把经过CK、F1、X1、D1 处理的试验土柱放置于云南农业大学水利学院开展室内试验。每天10: 00,用精度为1/10、量程为40 kg的电子秤称量土柱,连续称量42 d,计算土壤蒸发量。为了更直观地说明不同隔盐材料对土壤水分蒸发的影响,对蒸发抑制率进行计算,即不同隔盐材料处理的累积蒸发量与对照累积蒸发量的差值占对照累积蒸发量的百分数。土柱与传感器相结合,分别于蒸发试验第1、14、28和42天时,利用土壤墒情传感器(RS485类型)测定土柱内土壤的含水率和盐分含量,每隔6 cm测定1次。
1.3 数据统计与分析
采用Excel 2010处理数据;采用Origin 2018绘图。
2. 结果与分析
2.1 不同隔盐材料对土壤蒸发的影响
由图2可知:蒸发初期,不同隔盐材料处理下的土壤水分累积蒸发量差异不显著(P>0.05),蒸发强度表现为D1>F1>X1>CK;随着蒸发时间的延长,土壤累积蒸发量呈增加趋势,蒸发速率逐渐趋于平缓。蒸发5 d时,对照组的蒸发强度逐渐超过隔盐材料组,累积蒸发量表现为CK (532.4 g)>D1 (489.2 g)> F1 (485.1 g)>X1 (452.9 g),D1和F1土壤累积蒸发量差异不显著(P>0.05),但X1显著低于D1和F1 (P<0.05)。说明埋置隔盐层降低了土壤的累积蒸发量,与CK相比,3种隔盐材料中剑麻的效果最好,紫茎泽兰次之,小麦最差。此外,由表2可知:土壤水分蒸发抑制率为X1>F1>D1,与CK相比,D1、F1和X1的累积蒸发量在蒸发5、10 和25 d分别下降了10.80%、19.31%和22.82%,到蒸发后期各处理蒸发抑制率略有下降,累积蒸发量增长缓慢。因此,3种隔盐材料处理中,剑麻蒸发强度最低,蒸发抑制作用表现最好。
图 2 不同隔盐材料处理下土壤累积蒸发量的变化注:CK. 对照处理;F1. 紫茎泽兰为隔盐材料;X1. 剑麻为隔盐材料;D1. 小麦为隔盐材料;下同。Figure 2. Changes of cumulative evaporation of soil under different treatments of salt-isolating materialsNote: CK. control treatment; F1. Ageratina adenophora used as salt-isolating material; X1. Agave sisalana used as salt-isolating material; D1. wheat used as salt-isolating material; the same as below.表 2 不同隔盐材料的土壤水分蒸发抑制率Table 2. Inhibition rate of soil moisture evaporation under different treatments of salt-isolating materials% 隔盐材料
salt-isolating materials5 d 10 d 25 d 40 d D1 8.12±0.74 b 11.09±0.22 c 10.80±0.32 c 5.22±0.26 c F1 8.80±0.21 b 21.17±0.52 b 19.31±0.38 b 17.91±2.08 b X1 14.50±0.69 a 23.70±0.88 a 22.82±0.19 a 22.69±0.32 a 注:F1. 紫茎泽兰为隔盐材料,X1. 剑麻为隔盐材料,D1. 小麦为隔盐材料;同列不同字母表示具有显著差异 (P<0.05)。
Note: F1. Ageratina adenophora used as salt-isolating material, X1. Agave sisalana used as salt-isolating material, D1. wheat used as salt-isolating material; different letters in the same column indicate significant differences (P<0.05).2.2 不同隔盐材料对土壤剖面含水率的影响
由图3可知:不同隔盐材料改变了土壤结构,且都具有一定的吸水性,在不同处理下土壤含水率表现出一定差异性。(1) 蒸发1 d时,各处理0~12 cm、30~42 cm土壤含水率差异不显著(P>0.05),土壤平均含水率表现为F1>X1>D1>CK;与CK相比,F1、X1和D1的土壤含水率在0~18 cm分别提高6.06%、5.03%和3.46%,在18~30 cm增幅为47.51%、34.98%和23.07%,说明埋设隔盐层能提升上层土壤的持水能力。(2) 当蒸发试验进行至14 d时,不同处理下0~18 cm层土壤平均含水率表现为F1 (24.30%)>X1 (24.10%)>D1 (24.00%)>CK (22.60%),而这4个处理的18~30 cm层土壤平均含水率分别为21.90%、30.10%、27.60%和25.50%。与蒸发1 d时相比,CK、F1、X1和D1处理0~18 cm层的土壤平均含水率分别减少1.70%、6.00%、5.10%和3.70%,18~30 cm层的土壤平均含水率分别减少0.17%、2.54%、2.27%和1.70%。可见,不同处理下18~30 cm层土壤的平均含水率减小幅度差异不明显。与CK相比,在0~18 cm层设置隔盐层后土壤平均含水率都较大,其中D1处理的土壤平均含水率降幅最小,F1处理的降幅最大,表现为F1>X1>D1> CK,说明隔盐材料提高了土壤表层的失水速率,抑制下层水分的上移速率。(3) 蒸发至28 d时,表层土壤逐渐失水,形成干土层,蒸发强度进一步降低。CK、F1、X1和D1处理的0~18 cm层土壤平均含水率分别为19.73%、17.76%、18.50%和18.74%,18~30 cm层土壤平均含水率分别为20.53%、24.97%、22.93%和20.26%。(4) 蒸发至42 d时,与28 d相比,CK、F1、X1和D1的0~18 cm层土壤平均含水率分别减少1.33、1.49%、1.64%和1.92%,18~30 cm层土壤平均含水率分别减少1.40%、3.11%、2.33%和0.86%,土壤平均含水率变化差异不显著(P>0.05),说明土壤水分主要以水汽扩散的方式穿过干土层进入大气;与CK相比,F1、X1和D1的0~18 cm层土壤平均含水率分别降低11.58%、8.69%和5.38%,而18~30 cm层土壤的平均含水率分别提高14.26%、7.68%和1.42%,说明埋置隔盐层对土壤上层具有良好的保水性,且紫茎泽兰的保水性能最好。
2.3 不同隔盐材料处理对土壤盐分含量的影响
由图4可知:不同隔盐材料均能够抑制土壤盐分上移,且与蒸发过程相关。随着蒸发的进行,盐岩层的盐分随毛管水通过隔盐层上升到耕作层,水分蒸发后,使盐分积累在表层土壤中,表现为CK最大,F1最小。(1) 蒸发1 d时,土壤各深度层盐分含量差异较小,不同处理间耕作层和隔盐层平均含盐量较小,盐岩层含盐量较大,土壤中的盐分主要集中在盐岩层。(2) 蒸发至14 d时,不同隔盐材料处理的0~18 cm土层平均含盐量表现为CK>X1>F1>D1,18~30 cm土层的平均含盐量表现为CK>D1>X1>F1,30~42 cm土层平均含盐量表现为F1>X1>D1>CK,说明埋置隔层均可降低上层土壤(0~18 cm)的含盐量,降低土壤的输水能力;不同处理18~30 cm土层盐分累积明显,主要原因是隔盐材料处理分层压实后孔隙率有差异,并且不同材料的表面斥水性存在一定程度差异。(3) 蒸发至28 d时,不同隔盐材料处理的0~18 cm土层平均含盐量表现为CK>D1>X1>F1,18~30 cm土层的平均含盐量表现为CK>D1>X1>F1,30~42 cm土层CK、F1、X1和D1的平均含盐量分别为24.61、26.26、26.08和25.68 g/kg。各处理土壤平均盐分含量增幅较小,CK、F1、X1和D1的0~18 cm土层平均盐含量增幅分别为16.97%、14.50%、16.80%和15.68%,18~30 cm土层的平均盐含量增幅分别为11.81%、8.67%、9.67%和7.97%。(4) 蒸发42 d时,F1、X1和D1处理的0~18 cm土层平均盐含量比CK分别降低了34.83%、23.61%和12.50%,CK、F1、X1和D1处理30~42 cm土层平均含盐量分别为24.61、26.26、26.08和25.68 g/kg,说明埋置隔层能够有效抑制土壤盐分向土壤表层集聚,且紫茎泽兰抑制盐分的效果最明显。
3. 讨论
土壤水分是土壤盐分运移的重要载体,设置隔盐层会破坏原土体毛细管的连续性、增加土壤孔隙度。有研究表明:利用地上降雨和灌溉水对隔层以上土壤淋洗盐分,或通过隔层切断土壤的毛细管作用,阻隔地下水向上层运动引发返盐可以改善土壤理化性质,增加土壤有机质,优化土壤水盐分布,有效提高土壤 “保水抑盐”的能力[7]。隔层材料填充改变土壤结构的同时还能通过降低土壤累积蒸发量来降低土壤积盐量,达到改良盐碱的目的。地表覆盖可改变土壤上边界条件,重度盐渍土地表覆膜可减少蒸发量12.1%~25.5%,能降低表层土壤积盐量14.3%~32.4%[12]。地表覆膜的隔盐效果主要集中于0~10 cm的表层土壤,而作物根系生长分布不只局限于表土层,85%以上的根系分布在0~40 cm土层[13]。有学者提出:将表层覆盖材料埋设在地下适宜深度更利于土壤耕层脱盐[14]。本研究中,填充隔盐材料土壤的土壤蒸发强度和累积蒸发量低于裸土,减少蒸发量5.22%~22.69%,降低表层土壤积盐量12.50%~34.72%,这可能是由于不同隔盐层材料阻隔水分运移的机理不同,降低土壤蒸发速率和抑制的土壤水分蒸发效果也不同。小麦秸秆表面由疏水蜡组成,具有一定的斥水性,在一定程度上对土壤的蒸发产生阻抑作用,且小麦秸秆的覆盖使得水汽只能通过隔盐层间的毛细管道扩散,蒸发水分。剑麻剪裁后呈片状结构,分层压实后对土壤表层覆盖比较大,孔隙度较低,减缓了表层土壤与大气的水分能量交换。紫茎泽兰吸水性和持水性较强,降低了水汽扩散通量。
应用较多且降盐控盐效果较为理想的隔盐材料包括河沙、炉渣、陶粒、沸石、蛭石、玉米秸秆等。张清敏等[15]在盐渍化地区土地整理过程中提出“炉渣和玉米秸秆(隔盐材料)+隔盐层深度60 cm+有机肥(改良剂)”的改良方案能有效改良土壤性状。此外,隔盐材料能有效保水降盐,促进植物光合作用及生长。王琳琳等[16]在盐碱地刺槐造林中采用沸石、陶粒和河沙作为隔盐层材料,均有助于土壤保墒控盐、改善植物光合特性以及促进刺槐生长,其中沸石0~80 cm土体内盐分含量和土壤盐溶质浓度显著降低,为最佳隔盐材料。本研究中,各处理表层盐分含量随时间的推移呈上升趋势,且表层盐分含量因隔盐材料的填充而降低,隔盐层以下盐分含量上升,这可能是由于隔盐材料填充降低了土壤蒸发强度,减缓了可溶盐随水分向土壤表层运输的效率,进而降低土壤表层盐分含量,使盐分被阻断在隔盐层以下。
由于试验采用室内土柱模拟的方式进行,只研究了短时间内土壤剖面水盐的变化规律,未在室外进行长时间的大田或微区试验,考虑到隔盐材料长时间存在于土壤中会发生分解,长期利用是否会导致土壤理化性质发生变化,并且不同隔盐材料分解速率不一致,对土壤的改良效果和持续时间亦不明确,故在今后的研究中应加长试验周期,开展土柱模拟试验的同时进行大田试验,确保研究结果具有实践性。
4. 结论
(1) 埋置隔盐层能够抑制土壤水分蒸发。不同隔盐材料可在不同程度上降低土壤蒸发强度,土壤累积蒸发量表现为对照>小麦>紫茎泽兰>剑麻。土壤水分蒸发抑制作用表现为剑麻>紫茎泽兰>小麦,且蒸发抑制表现与隔盐材料有关,隔盐材料占比越大,蒸发抑制率越高。
(2) 埋置隔盐层能够提高土壤保水持水能力。在蒸发阶段,以剑麻、紫茎泽兰和小麦为隔层的土柱,0~18 cm土层的土壤含水率降幅大于对照组,18~30 cm土层的土壤含水率降幅小于对照组,保水能力表现为紫茎泽兰>剑麻>小麦>对照;蒸发强度主要受土壤导水率控制,隔盐材料剪裁处理后的片状结构减小了土壤水分的蒸发通道,从而使下层水分上移更缓慢,限制了土壤水分扩散运动,使下层保持更高的含水率。
(3) 随着蒸发的进行,水分由土柱底部向表层运移,液态水逐渐减少,气态水占优,因此单位时间内盐分运移速率逐渐缓慢。埋置隔层能够有效抑制盐分向土壤表层聚集,且紫茎泽兰的抑制盐分效果最明显。
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图 2 不同生长阶段枸杞根系菌根侵染率
注:CK. 对照,FS. 接种病原菌腐皮镰刀菌,RI. 接种根内根孢囊霉,RI+FS. 接种根内根孢囊霉后接种腐皮镰刀菌;不同小写字母表示不同处理之间差异显著(P<0.05);下同。
Figure 2. Mycorrhizal infection rate of L. barbarum root at different growth stages
Note: CK. control, FS. inoculated Fusarium solani, RI. inoculated Rhizophagus intraradices, RI+FS. inoculated R. intraradices first and then inoculated F. solani; different lowercase letters indicate significant differences among treatments (P<0.05); the same as below.
表 1 不同接种处理下枸杞根腐病发病率、病情指数及防治效果
Table 1 Incidence rate, disease index and control effect of Lycium barbarum root rot under different inoculation treatments
处理
treatment发病率/%
incidence rate病情指数
disease index防治效果/%
control effectCK 0 0 — FS 45 43 — RI 0 0 — RI+FS 20 16 63 注:CK. 对照;FS. 接种病原菌腐皮镰刀菌;RI. 接种根内根孢囊霉;RI+FS. 接种根内根孢囊霉后接种腐皮镰刀菌;下同。
Note: CK. control; FS. inoculated Fusarium solani; RI. inoculated Rhizophagus intraradices; RI+FS. inoculated R. intraradices first and then inoculated F. solani; the same as below.表 2 不同接种处理对枸杞生长参数的影响
Table 2 Effects of different inoculation treatments on the growth parameters of L. barbarum
处理
treatment株高/cm
height茎粗/mm
stem diameter鲜质量/g
fresh weight干质量/g
dry weightCK 70.27±0.76 b 9.85±0.72 bc 9.81±1.64 b 5.23±1.44 b FS 60.41±0.42 b 7.52±0.51 c 8.35±1.75 b 4.57±1.66 b RI 108.82±0.59 a 13.39±1.02 a 22.26±2.83 a 12.98±2.24 a RI+FS 109.51±0.56 a 11.13±1.28 ab 21.89±2.99 a 12.67±3.38 a 注:同列不同小写字母表示差异显著 (P<0.05);下同。
Note: In the same column, different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05); the same as below.表 3 不同接种处理对枸杞叶绿素含量的影响
Table 3 Effects of different inoculation treatments on chlorophyll content of L. barbarum
mg/g 处理
treatment叶绿素 a
chlorophyll a叶绿素 b
chlorophyll b总叶绿素
total chlorophyllCK 0.15±0.16 b 0.13±0.01 ab 0.28±0.01 c FS 0.09±0.03 c 0.11±0.01 b 0.20±0.02 d RI 0.27±0.30 a 0.17±0.02 a 0.44±0.02 a RI+FS 0.23±0.20 a 0.14±0.02 ab 0.37±0.02 b -
[1] 李捷. 甘肃省枸杞根腐病病原及生理生化抗病机理研究[D]. 兰州: 甘肃农业大学, 2015. [2] LIN C L, WANG C C, CHANG S C, et al. Antioxidative activity of polysaccharide actions isolated from Lycium barbarum Linnaeus[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2009, 45(2): 146. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2009.04.014.
[3] 张小彦, 何静, 侯彩霞, 等. 枸杞根腐病菌拮抗菌株的筛选与鉴定[J]. 浙江农业学报, 2020, 32(5): 859. DOI: 10.3969/j.issn.1004-1524.2020.05.14. [4] 陈伶俐. 柴达木地区枸杞根腐病病原菌生物学特性及药剂防治研究[D]. 西宁: 青海大学, 2015. [5] 方香玲, 张彩霞, 南志标, 等. 紫花苜蓿镰刀菌根腐病研究进展[J]. 草业学报, 2019, 28(12): 169. DOI: 10.11686/cyxb201905. [6] 黄咏明, 蒋迎春, 王志静, 等. 丛枝菌根真菌对植物根腐病的抑制效应及其机制[J]. 应用生态学报, 2021, 32(5): 1891. DOI: 10.13287/j.1001-9332.202102.036. [7] 贺学礼, 高露, 赵丽莉. 水分胁迫下丛枝菌根AM真菌对民勤绢蒿生长与抗旱性的影响[J]. 生态学报, 2011, 31(4): 1030. [8] 李芳, 高萍, 段廷玉. AM菌根真菌对非生物逆境的响应及其机制[J]. 草地学报, 2016, 24(3): 495. DOI: 10.11733/j.issn.1007-0435.2016.03.003. [9] 张钰, 唐明. 丛枝菌根真菌对青杨抗溃疡病生物量和抗病酶活性的影响[J]. 菌物学报, 2021, 40(5): 1112. DOI: 10.13346/j.mycosystema.200308. [10] JIA L, MATS UBARA Y I. Changes in SOD isozyme in mycorrhizal asparagus inoculated with Fusarium oxysporum[J]. Plant Root, 2016, 10(1): 30. DOI: 10.3117/plantroot.10.26.
[11] 王倡宪, 郝志鹏. 丛枝菌根真菌对黄瓜枯萎病的影响[J]. 菌物学报, 2008, 27(3): 397. DOI: 10.13346/j.mycosystema.2008.03.018. [12] 高萍. 丛枝菌根真菌和根瘤菌对苜蓿根腐病和叶斑病的防病促生作用[D]. 兰州: 兰州大学, 2017. [13] 高俊凤. 植物生理学实验指导[M]. 北京: 高等教育出版社, 2006. [14] MCGONIGLE T P, MILLER M H, EVANS D G, et al. A new method which gives an objective measure of colonization of roots by vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi[J]. New Phytologist, 1990, 115: 497. DOI: 10.1111/j.1469-8137.1990.tb00476.x.
[15] AN Z Q, HENDRIX J W, HENSON D E, et al. Evaluation of the “Most Probable Number” (MPN) and wet-sieving methods for determining soil borne populations of endogonaceous mycorrhizal fungi[J]. Mycologia, 1990, 82(5): 578. DOI: 10.2307/3760048.
[16] 李合生. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京: 高等教育出版社, 2006. [17] 李合生, 孙群, 赵世杰, 等. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京: 高等教育出版社, 2000. [18] NAKANO Y, ASADA K. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts[J]. Plant and Cell Physiology, 1981, 22(5): 868. DOI: 10.1093/oxfordjournals.pcp.a076232.
[19] 刘润进, 唐明, 陈应龙. 菌根真菌与植物抗逆性研究进展[J]. 菌物研究, 2017, 15(1): 74. DOI: 10.13341/j.jfr.2014.1711. [20] 贺超, 陈伟燕, 贺学礼, 等. 不同水肥因子与AM真菌对黄芩生长和营养成分的交互效应[J]. 生态学报, 2016, 36(10): 2798. DOI: 10.5846/stxb201410232077. [21] SMITH S E, JAKOBSEN I, GRØNLUND M, et al. Roles of arbuscular mycorrhizas in plant phosphorus nutrition: interactions between pathways of phosphorus uptake in arbuscular mycorrhizal roots have important implications for understanding and manipulating plant phosphorus acquisition[J]. Plant Physiology, 2011, 156(3): 1056. DOI: 10.1104/pp.111.174581.
[22] 董艳, 董坤, 杨智仙, 等. AM真菌控制蚕豆枯萎病发生的根际微生物效应[J]. 应用生态学报, 2016, 27(12): 4036. DOI: 10.13287/j.1001-9332.201612.022. [23] 徐冬梅, 贺忠群, 赵英鹏, 等. 低温胁迫下AMF对景天三七生长和生理特性的影响[J]. 草业科学, 2016, 33(12): 2444. DOI: 10.11829/j.issn.1001-0629.2016-0022. [24] AKHTAR M S, SIDDIQUI Z A. Biocontrol of a root-rot disease complex of chickpea by Glomus intraradices, Rhizobium sp. and Pseudomonas straita[J]. Crop Protection, 2008, 27(3/4/5): 415. DOI: 10.1016/j.cropro.2007.07.009.
[25] 刘芳洁. 菌根真菌提高紫苏根腐病抗性的机制研究[J]. 江苏农业科学, 2018, 46(11): 78. DOI: 10.15889/j.issn.1002-1302.2018.11.019. [26] 张伟珍, 古丽君, 段廷玉. AM真菌提高植物抗逆性的机制[J]. 草业科学, 2018, 35(3): 499. DOI: 10.11829/j.issn.1001-0.629.2017-0169. [27] 王晓瑜, 丁婷婷, 李彦忠, 等. AM真菌与根瘤菌对紫花苜蓿镰刀菌萎蔫和根腐病的影响[J]. 草业学报, 2019, 28(8): 144. DOI: 10.11686/cyxb2018453. [28] EKE P, WAKAM L N, FOKOU P V T, et al. Improved nutrient status and Fusarium root rot mitigation with an inoculant of two biocon trol fungi in the common bean (Phaseolus vulgaris L.)[J]. Rhizosphere, 2019, 12(1): 100172. DOI: 10.1016/j.rhisph.2019.100172.