3种因素对木棉组培苗生根的影响
Effects of Three Factors on the Rooting of Tissue Culture Seedling of Bombax ceiba
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Keywords:
- Bombax ceiba /
- rooting in vitro /
- rooting rate /
- adventitious root number
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蔓菁(Brassica rapa var. rapa)是十字花科(Cruciferae)芸苔属(Brassica)二年生草本植物，是青藏高原及周边高海拔地区传统种植的农作物，主要食用部位是膨大的肉质根，具有食用和药用价值[1-3]。目前，蔓菁栽培主要以农家自留品种为主，品种较为混杂且性状不稳定，极大地限制了蔓菁产品的开发[4]。因此，获得遗传性状稳定的蔓菁纯合品系是蔓菁新品种选育的必要条件。通过连续自花授粉获得遗传性状稳定的品种是传统育种的重要方法，但蔓菁自交不亲和的特性限制了自花授粉，因此其品种纯化需要探索其他方法。
目前，小孢子培养已成为作物育种的重要手段之一。通过小孢子培养获得纯合的二倍体植株，一方面能缩短作物育种周期，另一方面还可以分离出植物自身的隐性性状，进而丰富作物育种资源[5]。游离小孢子培养受许多因素的影响[6]，其中物种的基因型和小孢子的发育阶段是培育小孢子胚状体的决定性因素[7]。在白菜型油菜和甘蓝的游离小孢子培养中，选择单核靠边期到双核早期的小孢子更容易产生胚状体[8-9]。由于小孢子胚状体的诱导能力受基因调控，不同物种甚至同一物种的不同基因型出胚率也存在差异[10-12]。
在小孢子培养中，激素、活性炭和琼脂糖的配比及浓度会影响小孢子的产胚率[13-16]。这些培养条件与植物种类密切相关，不同植物的小孢子培养需要经过试验探索才能得出最佳条件。目前，蔓菁游离小孢子培养多以新疆蔓菁为试材[17-18]，为全面了解不同品种蔓菁小孢子的培养体系差异，本研究以多个蔓菁地方品种为研究对象，优化其游离小孢子的培养体系并比较不同地方品种出胚率的差异，为蔓菁的品种选育、创制和遗传改良提供纯合的二倍体株系。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
供试材料来自于实验室收集的54个蔓菁地方品种(表1)。传统种植的蔓菁经过持续种植和多次繁殖后，地方品种已经对当地环境形成独特的适应性，可以认为传统种植的地方品种具有独特的基因型。因此，在收集地方品种前，对蔓菁地方品种来源开展详细咨询，收集的品种仅包括传统种植的地方品种种子，不包括商业化的种子。将54个地方品种的种子在4 ℃环境中放置30 d进行春化，然后将种子播种于装有腐殖土的花盆中，植株进入盛花期后选取花蕾进行试验。
表 1 不同产地的蔓菁地方品种及其对小孢子胚诱导的影响Table 1. Different origins of turnip varieties and their effect on the microspore embryo induction.编号
code产地
origin细胞膨大
cell expansion每30蕾出胚数
number of embryos from 30 buds编号
code产地
origin细胞膨大
cell expansion每30蕾出胚数
number of embryos from 30 budsKTRG-B-02 云南香格里拉
Shangri-La, Yunnan− 0 KTRG-B-47 云南兰坪
Lanping Yunnan− 0 KTRG-B-03 青海囊谦
Nangqian, Qinghai+ 0 KTRG-B-54 云南宁蒗
Ninglang, Yunnan− 0 KTRG-B-07 四川阿坝
Aba, Sichuan+ 0 KTRG-B-56 新疆昌吉
Changji, Xinjiang+ 0 KTRG-B-09 云南会泽
Huize, Yunnan+ 0 KTRG-B-58 西藏八宿县
Basu, Tibet+ 5 KTRG-B-11 河北定州
Dingzhou, Hebei+ 2 KTRG-B-60 新疆昌吉市
Changji, Xinjiang+ 0 KTRG-B-14 四川甘孜
Ganzi, Sichuan− 0 KTRG-B-61 云南宁蒗
Ninglang, Yunnan− 0 KTRG-B-15 云南玉龙
Yulong, Yunnan+ 25 KTRG-B-63 云南宁蒗
Ninglang, Yunnan− 0 KTRG-B-17 西藏拉萨
Lhasa, Tibet− 0 KTRG-B-64 新疆和静
Hejing, Xinjiang+ 12 KTRG-B-19 四川西昌
Xichang, Sichuan+ 0 KTRG-B-65 新疆柯坪
Keping, Xinjiang+ 0 KTRG-B-20 云南玉龙
Yulong, Yunnan− 0 KTRG-B-66 云南宁蒗
Ninglang, Yunnan+ 0 KTRG-B-21 云南云龙
Yunlong, Yunnan− 0 KTRG-B-69 云南玉龙
Yulong, Yunnan+ 0 KTRG-B-23 云南洱源
Eryuan, Yunnan+ 0 KTRG-B-70* 尼泊尔
Nepal+ 2 KTRG-B-25 云南剑川
Jianchuan, Yunnan+ 0 KTRG-B-76 浙江温州
Wenzhou, Zhejiang− 0 KTRG-B-26 云南云龙
Yunlong, Yunnan+ 3 KTRG-B-86* 不丹
Bhutan+ 10 KTRG-B-27 云南剑川
Jianchuan, Yunnan+ 0 KTRG-B-89* 不丹
Bhutan+ 1 KTRG-B-31 云南晋宁
Jinning, Yunnan+ 0 KTRG-B-95* 不丹
Bhutan+ 0 KTRG-B-36 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-98* 不丹
Bhutan+ 0 KTRG-B-37 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-99* 不丹
Bhutan+ 0 KTRG-B-38 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-102 新疆柯坪
Keping, Xinjiang+ 25 KTRG-B-39 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-103 四川西昌
Xichang, Sichuan+ 0 KTRG-B-40 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-104 云南昆明
Kunming, Yunnan+ 0 KTRG-B-41 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-105 西藏尼玛
Nima, Tibet+ 0 KTRG-B-42 云南兰坪
Lanping, Yunnan− 0 KTRG-B-108 西藏尼玛
Nima, Tibet+ 0 KTRG-B-45A 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 12 KTRG-B-109 西藏尼玛
Nima, Tibet+ 0 KTRG-B-45B 云南兰坪
Lanping, Yunnan− 0 KTRG-B-112 云南会泽
Huize, Yunnan+ 11 KTRG-B-45C 云南兰坪
Lanping, Yunnan+ 0 KTRG-B-113 云南会泽
Huize, Yunnan+ 0 KTRG-B-46 云南兰坪
Lanping, Yunnan− 0 KTRG-B-168 云南会泽
Huize, Yunnan+ 0 注：“*”表示产地为国外；高温热激后小孢子发生膨大用“+”表示，未发生膨大用“−”表示。
Note: “*” means overseas; the expansion of microspores after high temperature heat shock was expressed as “+”, and no expansion was expressed as “−”.1.2 游离小孢子的分离纯化
蔓菁抽薹开花后，取下植株主枝和一级侧枝的花序轴放在4 ℃冰箱中进行24 h低温预处理。通过镜检测定蔓菁小孢子处于单核靠边期时的花蕾长度，然后选择单核靠边期的蔓菁花蕾，30个为1组放入50 mL离心管中。在离心管中加入75%乙醇溶液浸泡30 s，去掉乙醇后再加入2%次氯酸钠溶液浸泡15 min，以对花蕾表面进行杀菌；去掉次氯酸钠溶液后用无菌水洗涤3次，每次5 min；加入少量B5培养液(13%蔗糖，pH 5.8)后用无菌玻璃棒碾碎花蕾。破碎的花蕾组织混合液用双层300目无菌尼龙网过滤后放于10 mL无菌离心管中，离心3 min (1 000 r/min)后去除上清液，得到纯净小孢子。
1.3 不同基因型蔓菁品种小孢子出胚培养
54个蔓菁品种的小孢子出胚培养主要参照王春丽[19]的方法。用1/2 NLN-13培养液将小孢子的密度调至约1×105个/mL，然后将3 mL小孢子悬浮液分装于直径为60 mm的培养皿中；用封口膜封口后放入33 ℃恒温培养箱中暗培养24 h，统计各品种小孢子在高温热激24 h后是否发生细胞膨胀；然后转移到25 ℃的培养室中继续暗培养，25 d后统计小孢子出胚数。选择1个出胚率最高的蔓菁品种通过调整活性炭—琼脂糖配比及植物激素配比优化蔓菁小孢子培养条件。
1.4 不同质量浓度配比的琼脂糖与活性炭处理
将候选蔓菁品种的小孢子转至含不同琼脂糖(250和500 mg/L)和活性炭(10、15和25 mg/L)配比的1/2 NLN-13培养基中进行试验，以不添加琼脂糖和活性炭的处理为对照，25 d后统计小孢子出胚数。
1.5 不同质量浓度植物生长激素处理
在1/2 NLN-13培养基中加入不同质量浓度的NAA (0.05、0.10和0.20 mg/L)和6-BA (0.05、0.10和0.20 mg/L)对候选蔓菁品种进行游离小孢子培养，以不添加NAA和6-BA的处理为对照，25 d后统计小孢子出胚数。
1.6 小孢子再生培养
小孢子再生培养主要参考柯筱纯[20]的方法。将小孢子胚状体转移到1/2 MS固体培养基(MS+1%琼脂+120 mg/L 活性炭+4%蔗糖)上诱导成苗；成苗后将其移到生根培养基(1/2 MS+0.8%琼脂+1%蔗糖)上培养20~30 d；将生根后的小苗移到盛有腐殖土的花盆中继续生长。
1.7 小孢子植株倍性及表型鉴定
采用流式细胞术进行蔓菁小孢子再生植株的倍性鉴定，确定二倍体植株的比例。取0.5 g小孢子再生植株材料放置在培养皿中，用刀片快速切碎后加WPB裂解液2 mL 裂解细胞，游离出细胞核，使用滤网过滤后获取细胞核悬液作为待测样品。利用同样的方法提取基因组大小已经明确的大豆(Glycine max，威廉姆斯品种)叶片细胞核悬浮液作为标准样品。取适量待测样品和标准样品的细胞核悬液混匀作为1组，在混合细胞核悬液中加入PI染料150 µL，置于暗处染色30 min。使用流式细胞仪(CyFlow Space-3000)检测样品倍性，采用488 nm的蓝光激发，在计算机上用流式细胞仪自带的软件观察荧光强度，每组样品收集5 000~10 000个颗粒，荧光信号的强度代表其核内物质浓度，试验数据CV值需小于5%。
2. 结果与分析
2.1 基因型对小孢子胚诱导的影响
对54个蔓菁品种的花蕾进行小孢子培养，有41个品种的小孢子在33 ℃热激处理24 h之后开始膨大，膨大比例为75.92 %。继续诱导小孢子成胚发现：能发生小孢子膨大的11个品种均能诱导出小孢子胚状体，占总品种数的20.37%。KTRG-B-15和KTRG-B-102蔓菁品种的出胚率最高，均为25胚/30蕾(表1)。说明因品种不同引起的基因型差异是诱导蔓菁小孢子成胚的重要因素，选择出胚率高的蔓菁品种进行试验更易获得小孢子胚状体。由于实验室收集的KTRG-B-102蔓菁品种的种子较少，所以将KTRG-B-15蔓菁品种作为后续分析的试验材料。
2.2 活性炭与琼脂糖对小孢子胚诱导的影响
由表2可知：培养基中添加活性炭与琼脂糖质量浓度分别为10和250 mg/L为最佳组合，诱导KTRG-B-15蔓菁品种出胚数为38胚/30蕾；不添加琼脂糖和活性炭的1/2 NLN-13培养基诱导小孢子的出胚数为33胚/30蕾；而最高质量浓度的琼脂糖和活性炭处理后小孢子的出胚数明显减少。
表 2 不同质量浓度活性炭和琼脂糖组合下每30蕾蔓菁小孢子的出胚数Table 2. Embryos number of microspore embryogenesis per 30 buds of turnip under different mass concentration compositions of activated carbon and agarose琼脂糖质量浓度/(mg·L−1)
agarose mass concentration活性炭质量浓度/(mg·L−1)
activated carbon mass concentration0 10 15 25 0 33 − − − 250 − 38 19 25 500 − 22 27 12 2.3 植物生长激素对小孢子胚诱导的影响
由表3可知：不同激素配比会影响蔓菁小孢子出胚率。0.10 mg/L NAA和0.20 mg/L 6-BA组合下，KTRG-B-15蔓菁小孢子出胚数量最多，为137胚/30蕾。
表 3 不同质量浓度NAA和6-BA组合下每30蕾蔓菁小孢子的出胚数Table 3. Embryos number of microspore embryogenesis per 30 buds of turnip under different mass concentration compositions of NAA and 6-BANAA质量浓度/(mg·L−1)
NAA mass concentration6-BA质量浓度/(mg·L−1)
6-BA mass concentration0 0.05 0.10 0.20 0 20 − − − 0.05 − 51 44 62 0.10 − 38 112 137 0.20 − 66 42 27 2.4 小孢子再生植株倍性鉴定及表型差异分析
将KTRG-B15蔓菁小孢子胚状体继续培养，获得44株再生植株。其中4株被鉴定为单倍体植株，占比为9.09%；38株被鉴定为二倍体植株，占比为86.40%；2株被鉴定为嵌合体植株，占比为4.54 %。表明小孢子胚在发育过程中存在自然加倍现象，且二倍体植株的比例较高。
3. 讨论
小孢子培养技术在育种上有着广泛的运用。吴江生等[21]通过建立甘蓝型油菜小孢子培养技术，配合染色体加倍、试管苗继代越夏和田间移栽配套技术，成功培育出优质高产的品种华双3号，推广种植面积超过133万hm2。北京市蔬菜研究中心利用小孢子培养技术进行亲本选育，获得抗除草剂和抗黑斑病植株[22]。芸苔属小孢子培养研究最早始于1982年，LICHTER[23]利用游离小孢子培养技术成功培育出第1株甘蓝型油菜小孢子植株；20世纪末，国内外学者在多个品种上尝试建立小孢子培养体系，并着重研究影响小孢子成胚的因素。轩正英等[12]以8个新疆蔓菁品种为材料进行小孢子培养研究，最终获得73胚/30蕾的成胚效率，为蔓菁品种选育提供重要基础。
物种遗传背景是小孢子胚胎发生的决定因素，同一物种不同品种间小孢子的成胚比例明显不同。轩正英等[12]对新疆蔓菁品种的研究发现：8个蔓菁品种只有4个能诱导出胚；汪维红等[24]用7个品种的黄心乌白菜进行小孢子游离培养，但仅有3个品种出胚；耿建峰等[25]用54个白菜品种进行试验，结果表明小孢子胚诱导数差别极大。本研究用54个蔓菁地方品种(基因型)进行游离小孢子培养，有11个品种能诱导出胚状体，且出胚数量存在差异。国内种植的蔓菁多以地方品种为主，这些地方品种在不同的自然和人工选择压力下可能已经形成不同的遗传特征，可能会进一步影响其小孢子出胚能力，其具体机制还需进一步研究。
添加活性炭和琼脂糖对不同物种小孢子的成胚过程影响不同。有研究认为：活性炭能够促进小孢子胚状体诱导，在培养基中加入适宜的活性炭可以吸附有害物质，从而促进小孢子胚的产生[26]。也有研究显示：高含量的活性炭对植物小孢子胚诱导存在抑制作用。徐艳辉等[27]发现活性炭质量浓度为0.02 mg/mL时，3个基因型大白菜产胚量最多；而当活性炭质量浓度超过0.04 mg/mL，对小孢子产生起抑制作用。在蔓菁小孢子成胚过程中，添加活性炭和琼脂糖对小孢子胚状体诱导没有明显差异。这一现象与KELLER[28]的研究结果一致，加入活性炭和琼脂糖并不能提高小孢子的出胚率，甚至高质量浓度的活性炭或琼脂糖会使小孢子胚状体数量减少。
生长素和细胞分裂素能调节植物的生长和发育，在培养基中加入少量不同配比的生长素和细胞分裂素可显著增加小孢子胚状体数量[14,29]。杨易等[30]研究发现：添加0.1 mg/L 6-BA和0.1 mg/L NAA后，菜心小孢子的出胚率最高。不同品种的NAA和6-BA最适质量浓度配比不同，这可能是受品种制约。因此，需根据不同品种的特性调整激素配比以促进诱导小孢子胚状体。蔓菁KTRG-B15品种受6-BA和NAA质量浓度影响较大，适量添加6-BA和NAA可以提高该品种的成胚效率(137胚/30蕾)，且高于新疆蔓菁品种诱导小孢子胚状体数量[12]。
目前，可以通过DNA流式细胞仪倍性鉴定和花粉母细胞染色体计数等方法鉴定小孢子再生植株的倍性[31-33]。本研究发现：单倍体、二倍体和嵌合体同时存在，证明游离小孢子培养过程中有染色体发生自然加倍。盛鹏[32]对6个大白菜品种的小孢子自交后代抽薹性进行评价，结果表明有2个群体为极晚抽薹。本研究从38株二倍体植株中发现1株早花的再生植株(约4个月进入生殖生长，其余再生植株处于营养生长状态)，为后期蔓菁耐抽薹品系的研究提供了良好的遗传材料。
4. 结论
KTRG-B-15蔓菁品种单核靠边期的花蕾4 ℃预处理24 h，游离小孢子于添加0.10 mg/L NAA和0.20 mg/L 6-BA的1/2 NLN-13液体培养基中33 ℃热激处理24 h，25 ℃暗培养，其出胚率最优(137胚/30蕾)。优化后的出胚率是优化前的5.48倍。
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图 1 不同不定根数量的木棉生根苗
Figure 1. Rooted seedling of Bombax ceiba with different numbers of adventitious roots
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图 2 生根过程中木棉组培苗茎段横切面解剖结构变化
注：Ep. 表皮；Co. 皮层；Ph. 韧皮层；Xy. 木质部；Vc. 维管形成层；Pi. 髓部；Rp. 根原基；Ar. 不定根。
Figure 2. Change of cross section of stem segment anatomical structure during rooting of tissue cultured seedling of B. ceiba
Note: Ep. epidermis; Ph. phloem; Xy. xylem; Vc. vascular cambium; Pi. pith; Rp. root primordium; Ar. adventitious roots.
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图 3 不同不定根数量的木棉移栽苗
Figure 3. Transplanted seedling of B. ceiba with different number of adventitious roots
表 1 不同生长素处理对组培苗生根的影响
Table 1 Effects of different auxin treatments on the rooting of tissue culture seedling
试验编号
test No.生长素质量浓度/(mg·L−1)
mass concentration of auxin生根率/%
rooting rate不同根系数量生根苗占比/%
proportion of rooting seedling with different numbers of rootsIBA NAA 类型I type I 类型II type II 类型III type III 1 0 0.4 19.66±0.45 j 90.24±0.51 bc 5.32±0.55 h 4.43±0.28 e 2 0 0.8 11.25±0.78 lm 81.43±0.92 ef 17.78±0.40 f 0.79±0.68 f 3 0 1.2 9.72±0.61 lm 88.79±0.81 bcd 10.81±0.87 g 0.39±0.33 g 4 0 1.6 12.16±1.63 kl 72.04±1.14 g 19.03±0.58 ef 8.93±0.69 d 5 0.4 0 16.01±1.58 jk 90.16±1.81 bc 9.73±1.70 g 0.11±0.11 g 6 0.8 0 24.35±1.00 i 99.90±0.10 a 0.10±0.00 i 0.00±0.00 g 7 1.2 0 39.15±1.81 g 76.80±4.11 f 22.41±3.53 e 0.78±0.66 fg 8 1.6 0 34.21±2.04 h 86.47±1.34 cd 10.57±0.62 g 2.96±0.77 ef 9 0.8 0.4 54.89±1.04 f 83.89±0.75 de 15.76±0.65 f 0.35±0.28 g 10 1.2 0.4 60.25±0.82 e 50.41±0.51 i 38.20±0.84 ab 11.39±0.70 c 11 1.6 0.4 87.95±1.43 b 42.63±1.46 j 41.10±0.62 a 16.27±1.35 b 12 2.0 0.4 95.80±1.55 a 46.71±2.03 ij 36.00±2.35 b 17.29±0.89 b 13 1.2 0.2 67.05±1.71 d 65.19±2.72 h 26.68±0.61 d 8.13±2.14 d 14 1.6 0.2 62.44±1.46 e 68.24±0.80 gh 31.75±0.80 c 0.01±0.01 g 15 1.6 0.8 82.576±1.72 c 46.05±1.45 ij 31.40±0.74 c 22.55±0.71 a CK 0 0 7.27±0.67 m 91.76±1.00 b 8.23±1.00 gh 0.00±0.00 g 注：类型I、II和III分别为有1、2和3条不定根的生根苗占该处理下全部生根苗数量的百分比；不同小写字母表示不同处理间差异显著(P<0.05)；下同。
Note: Type I, II and III indicate the proportion of rooting seedling with one, two and three adventitious root in the total number of rooting seedling under the treatment, respectively; different lowercase letters indicate the significant difference between different treatments (P <0.05); the same as below.
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表 2 不同纵向划痕数量对组培苗生根的影响
Table 2 Effect of different longitudinal scratch numbers on the rooting of tissue culture seedling
纵向划痕数量
longitudinal scratches生根率/%
rooting rate不同根系数量生根苗占比/%
proportion of rooting seedling with different numbers of roots类型I type I 类型II type II 类型III type III 0 87.95±1.43 b 42.67±1.46 b 41.10±0.62 b 16.23±1.35 b 1 92.75±1.25 a 46.56±1.35 a 43.72±1.81 b 9.72±0.97 c 2 95.65±0.87 a 33.29±0.77 c 43.87±0.17 b 22.84±0.67 a 3 94.42±1.68 a 34.44±0.44 c 47.56±0.42 a 17.99±0.84 b
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表 3 不同暗培养处理时间对组培苗生根的影响
Table 3 Effect of different dark culture time on rooting of tissue cultured seedling
暗培养时间/d
dark culture time生根率/%
rooting rate不同根系数量生根苗占比/%
proportion of rooting seedling with different number of roots类型I type I 类型II type II 类型III type III 0 87.95±1.42 c 42.67±1.46 d 41.10±0.62 a 16.23±1.35 a 3 94.30±0.56 ab 63.47±0.87 b 24.63±0.66 c 11.90±0.44 b 6 97.36±0.60 a 58.20±1.74 c 31.04±1.73 b 10.76±1.96 b 9 92.06±0.94 b 55.29±0.51 c 40.76±0.25 a 3.95±0.46 c 12 88.30±1.14 c 67.87±0.92 a 26.52±1.00 c 5.61±0.51 c
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表 4 不同类型组培苗移栽生长情况
Table 4 Transplanting growth of different typestissue culture seedlings
组培苗类型
tissue culture seedling type成活率/%
survival rate鲜质量/g
fresh weight类型I type I 90.00±5.09 a 1.38±0.17 b 类型II type II 92.22±1.92 a 1.34±0.14 b 类型III type III 91.11±6.95 a 2.80±0.44 a
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期刊类型引用(1)
1. 张梦璐，张红，王超楠，黄志银，范伟强，张斌. 抗生素对耐抽薹大白菜小孢子胚胎发生的影响. 中国蔬菜. 2023(07): 45-51 . 
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