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猪繁殖与呼吸综合征病毒免疫过氧化物酶单层细胞检测方法的建立

李华玮, 付永, 黄岚, 郭宏伟, 乔宏兴, 赵绪永, 边传周

李华玮, 付永, 黄岚, 等. 猪繁殖与呼吸综合征病毒免疫过氧化物酶单层细胞检测方法的建立[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2020, 35(1): 62-67. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201907007
引用本文: 李华玮, 付永, 黄岚, 等. 猪繁殖与呼吸综合征病毒免疫过氧化物酶单层细胞检测方法的建立[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2020, 35(1): 62-67. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201907007
Huawei LI, Yong FU, Lan HUANG, et al. Establishment of Immunoperoxidase Monolayer Assay for Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2020, 35(1): 62-67. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201907007
Citation: Huawei LI, Yong FU, Lan HUANG, et al. Establishment of Immunoperoxidase Monolayer Assay for Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2020, 35(1): 62-67. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201907007

猪繁殖与呼吸综合征病毒免疫过氧化物酶单层细胞检测方法的建立

基金项目: 国家自然科学基金(31902284);河南省科技攻关项目(182102110021);河南牧业经济学院博士启动基金;河南牧业经济学院预防兽医重点学科(mxk2016102);河南牧业经济学院校科技创新团队(2018KYTD13)
详细信息
    作者简介:

    李华玮(1981—),女,河南郑州人,博士,讲师,主要从事动物疫病分子致病机制及诊断技术研究。E-mail: centrosome@126.com

    通信作者:

    边传周(1965—),男,河南商丘人,硕士,教授,主要从事动物疫病分子致病机制及诊断技术研究。E-mail:Chuanzhou_Bian @126.com

  • 中图分类号: S 858.28

摘要:
目的 建立一种可直观判断猪繁殖与呼吸综合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus, PRRSV)的检测方法。
方法 应用PRRSV多抗血清作为一抗,建立了PRRSV免疫过氧化物酶单层细胞检测体系,并对相关反应条件进行优化,对其特异性和敏感性进行检测。
结果 最佳病毒接种感染复数(multiplicity of infection,MOI)为0.1,最佳感染时间为24 h,一抗最佳稀释度为1∶1 000,所建立的PRRSV免疫过氧化物酶单层细胞检测方法与其他几种流行猪病无交叉反应。对300份来自不同地区的临床血清进行检测,IPMA与PCR检测阳性符合率达93%。
结论 该方法具有良好的特异性和敏感性,为PRRSV的临床检测提供新方法。

 

Establishment of Immunoperoxidase Monolayer Assay for Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus

Abstract:
Purpose In order to establish a method for visually determining porcine reproductive and respiratory syndrome virus detection.
Method Anti-PRRSV polyclonal serum was used as the primary antibody in this study to establish a PRRSV immunoperoxidase monolayer assay system, and to optimize the relevant reaction conditions detecting its specificity and sensitivity.
Result The best inoculation MOI value was 0.1 and the best infection time was 24 hours and the best dilution of primary antibody was 1:1 000.
Conclusion The established PRRSV immunoperoxidase monolayer assay had no cross-reaction with other endemic swine diseases. The positive coincidence rate of IPMA and PCR in 300 clinical serum samples collected from different regions reached 93%, indicating that this method has good specificity and sensitivity, which provides a new method for the clinical detection of PRRSV.

 

  • 猪繁殖与呼吸综合征(porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS)也称蓝耳病,是由PRRSV引起的一种以母猪流产和各年龄段猪呼吸障碍为主要特征的病毒性传染病[1-3]。PRRSV属尼多病毒目(Nidovirales)动脉炎病毒科(Arteriviridae)动脉炎病毒属(Arteriviridae),单股正链RNA病毒,基因组全长为15.4 kb[4-5]。PRRSV基因组编码的结构蛋白有GP2a、2b (E)、GP3-5、GP5a、M和N蛋白,其中囊膜糖蛋白GP5,基质蛋白M和核衣壳蛋白N是主要结构蛋白[6]。1987年,该病首先在北美被发现,此后在世界范围内广泛传播,给养猪业带来了巨大损失[7]。PRRSV有多种临床表现,最主要的特征是对妊娠母猪生殖功能的影响,妊娠晚期流产、木乃伊胎数量增加等。自1996年中国首次报道PRRS以来,该病在中国长期流行,危害巨大,是影响中国养猪业的重大传染病之一[8]

    PRRSV的正确诊断对于其防控有重要意义。目前病毒的分离鉴定、反转录-聚合酶链式反应(reverse transcription-polymerase chain reaction, RT-PCR)及荧光定量PCR (fluorescent quantitative PCR, QPCR)是实验室常用的检测方法[9]。GOU等[10]利用反转录环介导等温扩增与垂直流核酸检测条结合,为PRRSV检测提供了一种通用方法。近年来,以PRRSV N蛋白为抗原的IDEXX ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)试剂盒已被广泛用来检测PRRSV抗体。以重组Nsp7蛋白作为抗原的ELISA抗体检测试剂盒也已研发,其检测结果与以PRRSV N蛋白为抗原的IDEXX ELISA符合率达到97.6%,并能用来区分1型和2型PRRSV[11]。此外,以原核表达PRRSV M和N蛋白制备的抗体检测试纸已被广泛应用[12]。LI等[13]用PRRSV N蛋白单克隆抗体标金制备PRRSV抗原检测试纸,成为有效的PRRSV临床检测工具。通过大肠杆菌表达系统制备Nsp7重组蛋白,经过亲和层析和分子筛层析纯化后标金制备PRRSV抗体检测试纸,为临床检测PRRSV感染、疫苗免疫效果及抗体消长规律提供有力保障[14]

    免疫过氧化物酶单层细胞试验(immunoperoxidase monolayer assay,IPMA)是基于抗原抗体特异性结合的原理,在感染PRRSV的细胞中加入抗PRRSV多抗血清,充分孵育后再加入标有辣根过氧化物酶的二抗以及催化显色反应的底物,产生的砖红色沉淀附着在细胞表面,使用普通光学显微镜即可观察和判读结果。另外,IPMA细胞板可提前制备并在4 ℃条件下长期保存,反应结果也可长期保存并随时观察分析,目前还未见商品化的PRRSV IPMA抗体检测试剂盒。因此,本试验建立了PRRSV IPMA检测体系,通过优化反应条件和检测的特异性、敏感性,为PRRSV的防控和检测提供新方法。

    DMEM高糖培养基、胰蛋白酶和AEC显色液购自索莱宝生物公司。胎牛血清购自Gibco。TRIzol试剂、反转录试剂盒和EX Taq酶购自TAKARA公司。PRRS X3 ELISA抗体试剂盒购自IDEXX公司。PRRSV抗体检测试纸由河南农科院免疫学重点实验室研发并惠赠。辣根过氧化物酶(horseradish peroxidase, HRP)标记的羊抗猪的二抗购自Jackson Immune Research公司。脱脂奶粉、甲醇等试剂均为国产分析纯。

    Marc-145细胞由本实验室冻存,PRRSV病毒HN07-1株(GeneBank登录号为:KX766378.1)由河南农科院动物免疫学重点实验室分离并惠赠。PRRSV多抗血清由本实验室制备保存。

    猪圆环病毒2型(porcine circovirus type-2, PCV-2)、猪流行性腹泻病毒(porcine epidemic diarrhea virus, PEDV)、猪伪狂犬病毒(pseudorabies virus, PRV)、猪细小病毒(porcine parvovirus infection, PPV)和口蹄疫病毒(foot-and-mouth disease virus, FMDV) 多抗血清由本实验室保存,使用IDEXX PRRS X3 ELISA抗体检测试剂盒检测,结果显示繁殖与呼吸综合征抗体均为阴性。用于符合率试验的300份血清取自河南洛阳、驻马店、平顶山、登封和三门峡地区5家猪场(采样猪均大于两周龄)。

    将Marc-145细胞接种于96孔板中,长满80%以上孔时接种PRRSV,加入2%胎牛血清的DMEM培养基(维持液)放置于CO2培养箱中继续培养,同时设置未接毒的对照组;弃去病毒液,用PBST洗涤细胞3次;用预冷的无水甲醇固定细胞,加入5%脱脂奶封闭过夜;加入抗PRRSV多抗血清稀释液,37 ℃放置40 min;用PBST洗涤细胞3次;加入HRP-山羊抗猪二抗稀释液,37 ℃放置40 min;用PBST洗涤细胞3次;加入AEC显色液室温下作用5 min,洗去显色液倒置显微镜下观察,并记录试验结果。

    首先,采用组织半数感染(TCID50)方法测定PRRSV的滴度。Marc-145细胞用PBS洗涤3次,胰蛋白酶消化4 min,加入含有10%胎牛血清的生长液终止消化,反复吹打,使其细胞单个分散;后用排枪分别加入96孔板中,次日观察细胞变化,若细胞达到80%时,即可接种PRRSV。将病毒液按10倍系列稀释为10−1~10−10共10个稀释梯度,并分别接种于长满单层Marc-145细胞的培养液中,每个稀释梯度接种8孔,100 μL/孔,并留8个不接毒的孔作为空白对照,培养5 d,记录各孔细胞病变情况,出现病变即为感染,及时记录感染结果,重复操作3次取平均值。根据Reed-Muench法计算TCID50

    为了确定最佳IPMA反应条件,对病毒的接种量、培养时间和抗体稀释比例进行了优化。分别用MOI=0.01、0.1、0.5和1的病毒接种细胞,分别使用稀释比例为1∶500、1∶1 000和1∶3 000的一抗孵育细胞,分别于PRRSV感染后12、24 、36 和48 h收获细胞来验证IPMA的检测效果。

    稀释PRRSV病毒,使病毒滴度分别为MOI=0.01、0.1、0.5和1,分别感染96孔长满底面积80%以上的Marc-145细胞板,使用1∶1 000稀释比例的一抗,PRRSV感染时间为24 h进行敏感性试验,同时设置未感染组作为对照。

    按照1.3节方法让不同的操作者重复操作IPMA试验3次,病毒的接种量采用MOI=0.1,使用3份不同的PRRSV阳性血清和阴性血清作为一抗,一抗稀释比例均为1∶1 000,其他反应条件相同,检测IPMA试验的重复性。

    分别使用PCV-2、PEDV、PRV、CSFV、FMDV和PPV多抗血清进行交叉反应试验,以检测该方法的特异性。即用病毒感染96孔长满底面积80%以上的Marc-145细胞板,1∶1 000稀释比例的多抗血清,PRRSV感染24 h后进行特异性试验,以PBS组作为阴性对照。

    为了验证IPMA对PRRSV检测的可靠性,使用IPMA和RT-PCR技术同时对中国河南洛阳、驻马店、平顶山、登封和三门峡地区5家猪场的300份血清进行检测比较。

    参照NCBI上发布的HN07-1序列,利用NCBI在线引物设计软件Primer-Blast进行引物设计,上游引物为:5′-GCCAAATAACAACGGCAAGCA3′,下游引物为:5′-ATGAGTTGCTCCCGGGAAAG3′,扩增片段大小为332 bp。从PRRSV感染的细胞中提取总RNA,反转录合成cDNA。以转录产物为模版,使用EX Taq酶进行PCR扩增。反应程序为:95 ℃预变性5 min,95 ℃变性30 s,60 ℃退火1 min,72 ℃延伸50 s,共30个循环,72 ℃终延伸10 min。反应结束后4 ℃保存,加入5×核酸上样缓冲液,进行琼脂糖凝胶电泳检测,同时设置阴性对照。

    为了进一步评价IPMA的准确性,将无特定病原体的仔猪接种HN07-1毒株,另外3只未感染的仔猪免疫接种细胞培养液作为对照。血液样本分别在免疫后0、7、14、21、28、35 d采集,同时进行PRRSV抗体检测试纸、IDEXX PRRS X3 ELISA检测及IPMA检测。IPMA反应采用最优化的反应条件,IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒、PRRSV抗体检测试纸按照其说明书进行操作。

    采用组织半数感染(TCID50)方法测得PRRSV的滴度为1×10−6.25/mL。病毒接种结果显示:PRRSV接种MOI=0.01、0.1、0.5、1感染细胞24 h后都能够看到砖红色,随着PRRSV滴度增加颜色也加深,经过摸索发现MOI=0.1的感染量最为合适(图1)。

    图  1  不同感染复数的PRRSV感染细胞后IPMA检测结果
    Figure  1.  IPMA results of cells infected with PRRSV of different multiplicity infection

    使用MOI=0.1的PRRSV感染细胞,使用一抗的稀释浓度为1∶500背景颜色较深,提示有非特异性结合现象产生。使用一抗稀释浓度为1∶1 000颜色适中,一抗稀释浓度为1∶3 000时背景颜色较浅。结果显示:一抗稀释比例1∶1 000结果最佳(图2)。

    图  2  不同稀释比例的一抗处理细胞后的IPMA检测效果
    Figure  2.  The detection effect of IPMA treated with different dilution ratios of primary antibody

    使用MOI=0.1的PRRSV感染细胞,使用稀释浓度为1∶1 000的一抗孵育细胞,摸索PRRSV感染细胞12、24、36和48 h后IPMA检测的着色效果。结果显示在24 h显色效果最佳,36 和48 h大部分细胞发生着色(图3)。

    图  3  PRRSV感染细胞不同时间的IPMA检测效果
    Figure  3.  IPMA detection effect of PRRSV infected at different time

    敏感性试验结果显示:随着PRRSV稀释比例不断增大,IPMA显色程度也发生相应变化,砖红色逐渐由深变浅,当使用MOI=0.01的病毒感染细胞仍可以使细胞发生着色(图1),而阴性对照不着色,表明IPMA检测方法敏感性良好。

    不同的操作者重复操作IPMA试验3次,采用MOI=0.1的PRRSV感染细胞板,使用3份不同的PRRSV阳性血清和阴性血清作为一抗,一抗稀释比例均为1∶1 000,其他反应条件相同,结果发现IPMA试验的重复性良好。

    特异性试验结果显示:除了PRRSV血清的IPMA检测结果为阳性外,PCV-2、PEDV、PRV、CSFV、FMDV和PPV检测结果均为阴性,表明本试验建立的PRRSV IPMA检测方法具有良好的特异性。

    IPMA检测的阳性血清样品再使用RT-PCR进行检测。图4显示:病毒阳性对照组及IPMA阳性样品中都能扩增到1条特异性条带,大小约为332 bp,PBS对照组无任何扩增产物。

    图  4  RT-PCR检测结果
    注:M.分子量标准;1. PBS对照组;2~3. PRRSV阳性血清组。
    Figure  4.  The results of reverse transcription PCR
    Note: M. the molecular weight standard;1. PBS control group;2-3 are PRRSV positive sera group.

    为了进一步检测IPMA的有效性和可靠性,用IPMA与RT-PCR对河南洛阳、驻马店、平顶山、登封和三门峡地区5家猪场送检300份样品进行检测,并统计阳性和阴性符合率。阳性符合率为86.9%;阴性符合率为95.2% (表1)。

    表  1  IPMA与反转录PCR检测田间感染情况比较
    Table  1.  Detection PRRSV antibodies at different days after PRRSV infection in pig farm usingIPMA and RT-PCR
    IPMA RT-PCR
    阳性结果
    positive results
    阴性结果
    negative results
    总数
    total
    阳性结果positive results 206 3 209
    阴性结果negative results 31 60 91
    总数total 237 63 300
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    将IPMA与IDEXX PRRS X3 ELISA抗体检测试剂盒及PRRSV抗体检测试纸3种检测方法进行比较,使用血清样本采集自HN07-1攻毒的实验猪。在攻毒前7 d采集血清,试纸条、 IDEXX PRRS X3 ELISA及IPMA检测结果均为阴性。攻毒后14 d,IPMA及IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒检测所有血清样本均为阳性,试纸条检测结果有2头猪为阳性,1头为阴性;感染后21 d,3种检测手段结果都为阳性(表2)。总之,IPMA与试纸条的符合率为17/18,即94%,IPMA与IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒符合率为18/18,即100%。

    表  2  IPMA、IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒和试纸条3种检测方法比较
    Table  2.  Detection PRRSV antibodies at different days after PRRSV infection using IPMA、IDEXX PRRS 3X ELISA kit and the test strip
    感染后时间/d
    days post infection
    检测方法
    methods
    HN07-1
    1 2 3
    0 IPMA
    ELISA 0 0 −(0.007)
    Strip
    7 IPMA
    ELISA −(0.086) −(0.007) −(0.044)
    Strip
    14 IPMA + + +
    ELISA +(1.345) +(1.97) +(0.639)
    Strip + +
    21 IPMA + + +
    ELISA +(1.658) +(1.732) +(1.324)
    Strip + + +
    28 IPMA + + +
    ELISA +(1.658) +(1.765) +(1.804)
    Strip + + +
    35 IPMA + + +
    ELISA +(1.783) +(1.751) +(1.368)
    Strip + + +
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    目前,IPMA在畜禽传染病领域已经被广泛应用。张振仓等[15]建立了CSFV的IPMA检测体系,并确定其具有良好的灵敏性和特异性,为CSFV检测方法的开发奠定基础。在PCV-1和PCV-2型检测中,建立的IPMA检测方法与ELISA检测结果符合率达86%以上[16]。PPV IPMA检测方法与ELISA及血凝试验的符合率分别为98%和96%[17]。在猪肠增生病检测方面,IPMA与间接荧光试验(indirect immuno fluorescence, IFA)的检测结果几乎一致[18]

    目前,IFA和ELISA常用来检测血清中抗体。IPMA和其他免疫学检测方法一样,是一种抗原抗体特异性结合的实验方法,具有特异强、敏感性高、操作简单、对设备要求不高、实验结果可以长期保存等特点。此检测仅需一台普通的光学显微镜,且实验所需试剂耗材成本低,这些特点使得此方法有利于在临床应用中长期推广,适用于流行病学调查。

    在本研究中,通过对实验条件的优化最佳病毒接种量MOI值为0.1,最佳的病毒感染时间为24 h,一抗最佳稀释度为1∶1 000,所建立的PRRSV IPMA检测方法与其他几种临床流行猪病无交叉反应。对300份来自不同地区的临床血清进行检测,IPMA与PCR检测的阳性符合率达86.9%。将HN07-1攻毒的实验猪用IPMA与IDEXX PRRS X3 ELISA抗体检测试剂盒及PRRSV抗体检测试纸3种检测方法进行比较,IPMA与试纸条的符合率为94%,与IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒符合率为100%。研究结果表明:该方法具有良好的特异性和敏感性,有一定的应用和推广价值。但IPMA检测方法也有局限性,当PRRSV含量太低时不产生特异性的显色反应,其样本的阳性检出率比PCR和ELISA等检测方法略低,并且存在一定主观判断的偏差。综上所述,本研究建立了PRRSV的IPMA检测体系,优化并确定了该检测方法的最佳反应条件,为检测PRRSV的临床检测提供新工具。

  • 图  1   不同感染复数的PRRSV感染细胞后IPMA检测结果

    Figure  1.   IPMA results of cells infected with PRRSV of different multiplicity infection

    图  2   不同稀释比例的一抗处理细胞后的IPMA检测效果

    Figure  2.   The detection effect of IPMA treated with different dilution ratios of primary antibody

    图  3   PRRSV感染细胞不同时间的IPMA检测效果

    Figure  3.   IPMA detection effect of PRRSV infected at different time

    图  4   RT-PCR检测结果

    注:M.分子量标准;1. PBS对照组;2~3. PRRSV阳性血清组。

    Figure  4.   The results of reverse transcription PCR

    Note: M. the molecular weight standard;1. PBS control group;2-3 are PRRSV positive sera group.

    表  1   IPMA与反转录PCR检测田间感染情况比较

    Table  1   Detection PRRSV antibodies at different days after PRRSV infection in pig farm usingIPMA and RT-PCR

    IPMA RT-PCR
    阳性结果
    positive results
    阴性结果
    negative results
    总数
    total
    阳性结果positive results 206 3 209
    阴性结果negative results 31 60 91
    总数total 237 63 300
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    表  2   IPMA、IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒和试纸条3种检测方法比较

    Table  2   Detection PRRSV antibodies at different days after PRRSV infection using IPMA、IDEXX PRRS 3X ELISA kit and the test strip

    感染后时间/d
    days post infection
    检测方法
    methods
    HN07-1
    1 2 3
    0 IPMA
    ELISA 0 0 −(0.007)
    Strip
    7 IPMA
    ELISA −(0.086) −(0.007) −(0.044)
    Strip
    14 IPMA + + +
    ELISA +(1.345) +(1.97) +(0.639)
    Strip + +
    21 IPMA + + +
    ELISA +(1.658) +(1.732) +(1.324)
    Strip + + +
    28 IPMA + + +
    ELISA +(1.658) +(1.765) +(1.804)
    Strip + + +
    35 IPMA + + +
    ELISA +(1.783) +(1.751) +(1.368)
    Strip + + +
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出版历程
  • 通信作者:  边传周 Chuanzhou_Bian @126.com
  • 收稿日期:  2019-07-05
  • 修回日期:  2019-10-29
  • 网络首发日期:  2019-12-31

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