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放线菌菌株1331发酵工艺优化及对南方根结线虫的作用效果

胡梦君, 胡先奇, 刘沛, 梁艳, 杨艳梅

胡梦君, 胡先奇, 刘沛, 等. 放线菌菌株1331发酵工艺优化及对南方根结线虫的作用效果[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2020, 35(2): 213-220. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201805023
引用本文: 胡梦君, 胡先奇, 刘沛, 等. 放线菌菌株1331发酵工艺优化及对南方根结线虫的作用效果[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2020, 35(2): 213-220. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201805023
Mengjun HU, Xianqi HU, Pei LIU, et al. Optimization of the Fermentation Conditions of Actinomycete Strain 1331 and Its Effects on Meloidogyne incognita[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2020, 35(2): 213-220. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201805023
Citation: Mengjun HU, Xianqi HU, Pei LIU, et al. Optimization of the Fermentation Conditions of Actinomycete Strain 1331 and Its Effects on Meloidogyne incognita[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2020, 35(2): 213-220. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201805023

放线菌菌株1331发酵工艺优化及对南方根结线虫的作用效果

基金项目: 云南省现代农业蔬菜产业技术体系建设专项(2018KJTX0011)
详细信息
    作者简介:

    胡梦君(1991—),女,河南商丘人,硕士研究生,主要从事植物线虫病害防治研究。E-mail:hmj521dyx@126.com

    通信作者:

    胡先奇(1965—),男,云南盐津人,博士,教授,主要从事植物病理学和植物线虫学研究。E-mail:xqhoo@126.com

  • 中图分类号: S 432.45

摘要:
目的研究放线菌菌株1331的最佳发酵工艺条件,并探究其发酵液对南方根结线虫2龄幼虫的抑杀作用。
方法在摇瓶试验中采用单因素筛选和正交试验对其发酵条件进行优化。
结果该菌株的最佳摇瓶发酵培养基为发酵培养基Ⅱ;最佳发酵条件为装液量80 mL (500 mL摇瓶),种子液接种量为5% (体积分数),初始pH值7.0,培养温度25 ℃,150 r/min培养7 d。该条件下菌株1331产孢量为1.68×109 CFU/mL,其5%发酵稀释液处理南方根结线虫卵9 d,卵孵化率与对照相比降低了70.59%;10%和20%发酵稀释液对南方根结线虫2龄幼虫48 h的校正死亡率分别达88.97%和100%。
结论放线菌菌株1331发酵液可有效抑杀南方根结线虫,具有潜在生防价值。

 

Optimization of the Fermentation Conditions of Actinomycete Strain 1331 and Its Effects on Meloidogyne incognita

Abstract:
PurposeIn order to study the optimization of fermentation conditions and explore toxicity effects of 1331 fermented fluid to the second-stage juveniles of Meloidogyne incognita (Mi J2).
MethodSingle-factor and orthogonal test were used in shaking flasks to optimize the fermentation conditions of strain 1331.
ResultThe optimum fermentation culture medium was fermentation mediumⅡ. And the optimal fermentation condition was as follows: medium volume 80 mL in 500 mL shaking flask, inoculation size of 5% (volume fraction), initial pH 7.0, culture temperature 25 ℃, shaking at 150 r/min for 7 days. Under this condition, the sporulation of strain 1331 was 1.68×109 CFU/mL; compared with the control, the hatching rate of Mi J2 was lowered down by 70.59% by dealing with 5% 1331 supernatant fermented fluid 9 d, and the corrected mortality rate of Mi J2 was 88.97% and 100% by dealing with 10% and 20% 1331 supernatant fermented fluid for 48 h.
ConclusionThe strain 1331 fermented fluid had toxicity to Mi J2.

 

  • 细胞程序性死亡(programmed cell death, PCD)是一种由基因控制的细胞自主而有序的死亡行为,其过程受细胞内外多种信号系统的诱导,并受细胞内部多种信号转导因子级联反应的调控[1-2]。Ca2+是真核细胞信号转导的核心组分之一,在细胞PCD过程中具有诱导、启动和调节等十分重要的作用[3-10]。目前有关Ca2+与植物PCD的相关研究发现,Ca2+作为第二信使调控着植物PCD的信号转导过程[11]。一些外界信号,如IAA、Eth、CTK等第一信使经其受体进行一系列跨膜信号转换后,调节Ca2+的分布以及在特定部位含量瞬间变化而产生细胞内Ca2+信号,Ca2+信号再调节或激活其他PCD相关因子,进而影响着细胞PCD过程中一系列的生理生化反应以致形态学的变化[8, 11]。显然,在植物PCD过程中,细胞内Ca2+的分布与转移即“时空性” 是形成Ca2+信号的基础[2, 12]

    为解析Ca2+信号对植物不同部位PCD过程的调控关系,人们分别对不同植物的不同器官、组织PCD过程中的Ca2+分布的时空变化进行了较多的研究[7-8, 13-14],但至今未见有关木本植物芽体PCD过程中Ca2+分布的时空变化研究。我们首次发现:替码板栗枝条上的前段芽体可发生PCD导致枝条前段自然衰亡,使其树体在栽培上具有自然控冠、修剪省工的独特优势,并将替码板栗芽体PCD过程划分为5个特征明显时期(S1~S5),前4个时期(S1~S4)芽体组织内Ca2+浓度高于非替码板栗[1],说明Ca2+参与替码板栗芽体PCD过程。但是,Ca2+在替码板栗芽体内部分布的时空动态变化及其对PCD过程的调节关系未知。因此,在已有研究的基础上,我们在替码板栗芽体发生PCD时期,利用焦锑酸盐沉淀技术在芽体细胞超微结构水平上研究Ca2+分布的时空变化,对比同期Ca2+在非替码板栗芽体内的分布差异,探讨Ca2+信号与芽体PCD过程间的关系,以期揭示替码板栗芽体完整的PCD信号转导途径及胞内级联反应,为人为调控板栗芽体PCD提供理论依据。

    试验地位于河北省农林科学院昌黎果树研究所板栗种质资源圃,栗园土质为砾质沙壤土,株行距4 m×4 m,常规管理水平。选用树龄均为10年生的树体健壮、生长正常、无病虫害的替码板栗品种X12和非替码板栗品种大板红为试验对象,每株树分东南西北4个方向随机采集树冠外围结果枝上部芽体50个作为1个试验样品,5次重复,样品釆集按照雄花脱落后20 d (S1时期)、25 d (S2时期)、30 d (S3时期)、35 d (S4时期)、40 d (S5时期) 5个时期进行[15]

    按照焦锑酸钾沉淀法制样[14]。样品在Leica EM-UC6超薄切片机上用钻石刀切片,切片厚度为70 nm,不染色,采用透射电镜(日立,H-7 500)观察,CCD数码相机(Gatan 832)拍照。

    每种材料的超微定位至少观察10个视野,选取典型区域进行拍照。对照样品的切片置于100 mmol/L (pH 7.8)的EGTA中37 °C孵育2 h,然后观察拍照。

    S1时期,替码板栗X12和非替码板栗大板红芽体细胞骨架结构正常,细胞壁清晰;质膜结构完整;细胞核结构完整,核膜双膜结构明显,核仁清晰;液泡膜结构完整,清晰(图1a、b图2a)。

    图  1  替码板栗X12 S1~S5时期内芽体细胞Ca2+的分布
    注:a)~l)中的黑色颗粒(箭头所示)是显示Ca2+存在的焦锑酸钙沉淀;a) S1时期:Ca2+主要分布在细胞间隙和细胞壁处,液泡膜附近有较多Ca2+分布,细胞质和细胞核内有少量Ca2+颗粒,液泡内没有Ca2+颗粒;b) S1时期:内质网上有较多Ca2+;c) S2时期:细胞间隙中的Ca2+分布较少,较少Ca2+颗粒沿着细胞壁排列,细胞质中分布着较多Ca2+,沿着核膜分布着整齐的1圈Ca2+颗粒,细胞核内有少量Ca2+分布;d) S2时期:液泡膜附近,及解体的液泡内有大量Ca2+的分布;e) S3时期:细胞间隙和细胞壁上Ca2+颗粒较少,细胞质中的Ca2+分布很多;f) S3时期:质膜和胞间连丝处有大量Ca2+颗粒,液泡膜和细胞核膜附近有大量的Ca2+;g) S4时期:细胞壁上无Ca2+颗粒;h) S4时期:Ca2+呈无规则分布,主要集中在液泡碎片处;i)、j) S5时期:Ca2+随降解的细胞器碎片成块状聚集;k)、l):切片经EGTA处理后,箭头所示Ca2+被螯合后的空洞,Ca2+沉淀颗粒被消除。N.细胞核;Nu. 核仁;Cw. 细胞壁;Re. 内质网;Pm. 质膜;Vm. 液泡膜;V. 液泡。
    Figure  1.  Ca2+ distribution of the buds cell at five stage of apical-bud-senescence chestnut X12
    Note: The black particles (arrowhead) in a)-j) are the calcium antimonite precipitate which shows calcium’s distribution. a) during the S1 period: there were a great amount of calcium particles in the intercellular space or on the cell wall, some calcium particles near the tonoplast, less calcium particles in the cytoplasm and the nucleus, no calcium particles in the vacuole; b) during the S1 period: many calcium particles on the endoplasmic reticulum; c) during the S2 period: Less calcium particles in the intercellular space, less calcium particles were arranged along the cell wall,many calcium particles in the cytoplasm, a neat circle of calcium particles is distributed along the nuclear membrane, less calcium particles in the nuclear; d) during the S2 period: many calcium particles near the tonoplast, and in the disassembled vacuole; e) during the S3 period: less calcium particles in the intercellular space or on the cell, and more in the cytoplasm; f) during the S3 period: there were a great amount of calcium particles on the plasma membrane and the plasmodesmata, and many calcium particles near the tonoplast and nuclear membrane; g) during the S4 period: there were almost no calcium particles on the cell wall; h) during the S4 period: calcium particles were randomly distributed at the vacuole debris; i) and j) during the S5 period: dalcium particles aggregated with degraded organelle fragments; k) and l) after the slices were treated with EGTA, the arrows showed the cavity of calcium sequestered by EGTA and the calcium precipitate particles were eliminated. N. nucleus; Nu. nucleolus; Cw. cell wall; Re. endoplasmic reticulum;Pm. plasmalemma; Vm. tonoplast; V. vacuole.
    图  2  非替码板栗大板红S1~S5时期内芽体Ca2+的分布
    注:a) S1时期:Ca2+主要分布在细胞壁上,沿着细胞壁紧密整齐地排列1圈;b) S2时期:细胞间隙中有很多Ca2+呈黑色小颗粒状分散存在;c) S3时期:内质网上有很多Ca2+颗粒分布,细胞核内有少量Ca2+颗粒分布;d) S4时期:细胞质内存在少量Ca2+颗粒;e) S5时期:液泡内几乎检测不到Ca2+存在。N. 细胞核;Nu. 核仁;Cw. 细胞壁;Re. 内质网;Pm. 质膜;Vm. 液泡膜;V. 液泡 ;Chl. 叶绿体
    Figure  2.  Ca2+ distribution of the buds cell at five stage of no-replaceable bud chestnut Dabanhong
    Note: a) during the S1 period: there were a great amount of calcium particles were arranged along the cell wall; b) during the S2 period: there were a great amount of calcium particles were small and scattered within the intercellular space; c) during the S3 period: many calcium particles on the endoplasmic reticulum, and less in the nucleus; d) during the S4 period: there were a few of calcium particles in the cytoplasm; e) during the S5 period: there was almost no calcium particles in the vacuole. N. nucleus;Nu. nucleolus; Cw. cell wall; Re. endoplasmic reticulum; Pm. plasmalemma; Vm. tonoplast; V. vacuole; Chl. chloroplast

    这一时期,替码板栗X12和非替码板栗大板红的Ca2+分布差异不大,Ca2+均主要分布在细胞间隙和细胞壁处。Ca2+呈黑色小颗粒状分散存在于细胞间隙中,或沿着细胞壁紧密整齐地排列一圈;内质网上也均有较多Ca2+颗粒分布;质膜和液泡膜附近也有较多Ca2+分布,但质膜附近Ca2+沉淀颗粒比液泡膜附近多;另外,细胞质和细胞核内也有少量Ca2+颗粒均匀存在;液泡内几乎检测不到Ca2+存在(图1a、b图2a)。

    将样品用Ca2+的专一性螯合剂EGTA处理后在透射电镜下观察,发现应该有焦锑酸钙沉淀颗粒的部位变成空洞(图1k、l),这说明Ca2+沉淀颗粒被消除,本研究中Ca2+的定位是可靠的。

    S2时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构正常(图2b),替码板栗X12芽体细胞的细胞壁清晰,质膜结构完整,但液泡和细胞核变化较为明显,其中,液泡体积变大,个别液泡膜部分位置破裂变得不完整;细胞核体积变小,核仁变模糊(图1c、d)。

    与S1时期相比,非替码板栗大板红的Ca2+分布没有明显变化(图2b)。替码板栗X12 芽体细胞内质网上Ca2+的分布变化不明显,但其他部位Ca2+的分布发生了变化:细胞间隙中的Ca2+分布减少,Ca2+沉淀颗粒仅沿着细胞壁排列;细胞质中Ca2+分布开始增多,在细胞质膜附近均匀分布着较多Ca2+沉淀颗粒;液泡膜附近开始出现大量Ca2+沉淀颗粒,部分解体的液泡内有大量Ca2+的分布;细胞核膜附近Ca2+颗粒也增加,沿着核膜分布着整齐的1圈Ca2+沉淀颗粒,细胞核内也有少量Ca2+分布(图1c、d)。

    S3时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构仍保持正常(图2c),而替码板栗X12细胞结构进一步解体,细胞形状变得不规则,部分细胞壁出现断裂;液泡数量增多,液泡膜边界变得模糊,而且大部分液泡膜破裂;细胞核降解严重,细胞出现质壁分离现象(图1e、f)。

    这一时期,非替码板栗大板红的Ca2+分布没有明显变化,仍然主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上。而替码板栗X12 Ca2+的分布发生了比较明显的变化:细胞间隙中Ca2+变得极少,Ca2+沉淀颗粒分布比较分散;细胞壁上Ca2+颗粒也明显减少;质膜和胞间连丝处则积累大量Ca2+颗粒;细胞质中的Ca2+分布明显增多;破裂的液泡内和液泡周围Ca2+颗粒也明显增多,呈小颗粒状分散分布;细胞核膜附近也积累了大量的Ca2+,呈小颗粒状或针状分布,并且密度较大;细胞核内Ca2+沉淀颗粒也明显增多,并呈均匀分布(图1e、f)。

    S4时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构仍没有任何降解迹象(图2d),而替码板栗X12细胞结构则进一步解体:细胞骨架降解无法维持完整的结构,细胞壁多处出现断裂,液泡完全降解,细胞核进一步解体,由膜包被形成明显凋亡团粒,此时细胞内细胞器降解破碎,碎片浓缩于细胞中形成个数大小不等的团粒(图1g、h)。

    与S3时期相比,非替码板栗大板红的Ca2+分布依旧没有明显变化(图2d),而替码板栗X12的Ca2+黑色沉淀颗粒在细胞内呈无规则分布,质膜和细胞壁上分布较少,几乎集中于破碎的液泡膜和液泡碎片处,个别Ca2+成团粒状积累(图1g、h)。

    S5时期,非替码板栗大板红细胞骨架结构仍保持正常,几乎没有变化,Ca2+仍然主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上,细胞质和细胞核中Ca2+依旧分布很少,液泡中仍检测不到Ca2+的存在(图2e)。而替码板栗X12此时细胞已经死亡,细胞骨架降解或变形严重,细胞壁萎缩,液泡、细胞核和其他细胞器已经不完整存在,均降解破碎,Ca2+随降解的细胞器碎片成块状聚集(图1i、j)。

    Ca2+作为第二信使实现信号传递的过程是通过精确控制细胞质Ca2+的时间、空间和浓度参数的变化来实现的,显然细胞内Ca2+的分布与转移是形成Ca2+信号的基础[16]。在植物细胞中,细胞间隙和细胞壁是胞外Ca2+库,液泡、内质网和线粒体等细胞器是胞内Ca2+库,在植物细胞基质中游离Ca2+水平很低,Ca2+主要储存在胞外和胞内钙库中,当细胞受到外界生物或非生物刺激时,引起细胞内钙库Ca2+的释放或胞外Ca2+内流,造成细胞质基质内Ca2+水平的迅速升高,形成Ca2+信号,从而引起细胞体内的一系列级联反应,引发一系列生理生化过程,从而起到传递胞外信号的作用[5, 17]。辣椒叶片导管分子细胞程序性死亡(PCD)过程中细胞质中增加的Ca2+来自于胞外钙库(细胞壁和细胞间隙)[13];毛竹茎秆纤维细胞PCD过程中细胞质中Ca2+浓度的增加主要来自于胞内钙库(液泡)[14]。本研究中,Ca2+亚细胞定位发现:对照的非替码板栗大板红在S1~S5时期,细胞内Ca2+的时空变化不明显,Ca2+一直主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上;而在替码板栗X12芽体PCD过程中细胞内Ca2+空间和浓度发生明显变化,S1时期Ca2+主要分布在细胞壁和细胞间隙处,S2时期细胞壁和细胞间隙中的Ca2+颗粒减少,细胞质、液泡和细胞核中的Ca2+颗粒明显增加,S3时期细胞质中的Ca2+颗粒达到了最高值,这说明替码板栗X12芽体PCD过程中激素等第一信使引起了细胞内Ca2+的重新分布和浓度发生变化,即形成了细胞钙信号,而这种钙信号来源可能主要来自胞外钙库(细胞壁和细胞间隙)。这与辣椒导管分子PCD的相关研究结果[13]一致。另外,本研究发现非替码板栗大板红在S1~S3时期,Ca2+除了一直主要分布在细胞壁、细胞间隙上外,内质网上也一直分布较多,说明在非替码板栗大板红芽体中,内质网可能是胞内钙库,但是替码板栗X12在S1~S2时期内质网上的Ca2+时空变化不明显,所以还不能确定替码板栗X12芽体PCD过程中Ca2+信号形成的来源也包括胞内钙库(内质网),有关这方面的结果还需要进一步研究验证。

    植物PCD过程受细胞内外多种信号系统的诱导和调控[2, 5],而Ca2+在整个PCD信号转导过程中起着接收和传递信号的作用,而且钙信使系统起作用的中心环节是细胞中Ca2+的空间和浓度的变化[8, 15, 18]。前人研究表明:细胞质内增加的Ca2+激活了一系列用于细胞质和细胞核降解的钙依赖性水解酶活性,从而引发了细胞的PCD。另外还可以激活核膜上ATP依赖的Ca2+摄取系统,升高细胞核的Ca2+浓度,并导致核酸内切酶的活化和DNA的断裂[19-20]。GROOVER等[21]研究认为:Ca2+的胞质内流导致液泡膜解体和细胞质流动停止,进而启动了细胞死亡,然后解体的液泡和细胞质混合而引起了细胞的原位自溶。本试验中,替码板栗X12芽体细胞内Ca2+空间和浓度发生的动态变化与芽体细胞PCD发生相对应。S1时期,Ca2+主要分布在细胞壁和细胞间隙处,此时细胞骨架结构正常,细胞器完整;S2时期,细胞间隙中Ca2+减少,细胞质、液泡膜和细胞核膜附近Ca2+开始增多,此时部分液泡轻微破裂;S3时期,细胞间隙和细胞壁上Ca2+颗粒极少,细胞质、细胞核、破裂的液泡内及液泡周围Ca2+明显增多,而此时细胞进一步解体,细胞壁、液泡、细胞核降解严重,而且DNA降解严重[22];S4时期,细胞解体严重,Ca2+在质膜和细胞壁上分布较少,主要集中于破碎的液泡膜和液泡碎片处,此时芽体DNA降解片段形成了模糊的弥散带[22];S5时期,细胞死亡,细胞骨架降解或变形严重,细胞壁萎缩,液泡、细胞核和其他细胞器已经不完整存在,均降解破碎,Ca2+随降解的细胞器碎片聚集在团粒处,此时电泳已经检测不到芽体DNA的存在[22]。而对照品种大板红在S1~S5时期,Ca2+一直主要分布在细胞壁、细胞间隙和内质网上,细胞骨架结构一直保持正常,而且芽体DNA一直未发生降解现象[22]。以上结果说明:Ca2+从细胞壁和细胞间隙向细胞质内、液泡和细胞核附近及内部转移引起替码板栗芽体PCD,Ca2+的时空变化与芽体PCD有密切关系。笔者推测,细胞质、液泡和细胞核内Ca2+的增加可能首先直接或间接导致了液泡的破裂,之后引起DNA降解及细胞骨架的解体。但Ca2+内流到细胞后到底是激活了何种促使液泡膜破裂的蛋白酶导致液泡破裂以及液泡内释放了何种PCD执行阶段的相关酶降解细胞仍未可知,有关这方面的问题有待进一步细化研究。

  • 表  1   正交试验因素水平表

    Table  1   Factors and levels of orthogonal test

    水平
    levels
    因素factors
    装液
    量/mL
    medium
    volume
    接种量/%
    inoculation
    amount
    培养
    时间/d
    culture
    time
    pH温度/℃
    temperature
    摇床转速/
    (r·min−1)
    rotation speed
    1 80 576.525120
    21001087.030150
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    表  2   不同培养基对菌株1331发酵液的影响

    Table  2   Effects of different media on the strain 1331 fermentation fluid

    培养基
    media
    产孢量×108/
    (CFU·mL−1)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    24 h48 h
    g 2.445.46±3.13 cC55.01±6.93 cC
    gⅠ 6.058.87±3.28 bB66.15±2.84 bB
    gⅡ13.272.13±4.77 aA79.54±5.51 aA
    注:同列数据后不同小写字母表示数据间差异显著(P<0.05),不同大写字母表示数据间差异极显著(P<0.01);下同。
    Note: Different lowercase letters in the same columns indicate significant difference at 0.05 level and different capital letters indicate extremely significant difference at 0.01 level; the same as below.
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    表  3   不同pH对菌株1331发酵液的影响

    Table  3   Effects of different initial pH on the strain 1331 fermentation fluid

    pH产孢量×108/
    (CFU·mL−1)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    24 h48 h
    6.5 9.064.03±1.80 bAB71.44±3.87 bAB
    7.012.468.90±6.45 aA76.90±3.77 aA
    7.5 8.360.36±4.21 bB68.40±6.01 bB
    8.0 3.450.69±8.75 cC54.45±8.57 cC
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    表  4   不同摇床转速对菌株1331发酵液的影响

    Table  4   Effects of different rotation speed on the strain 1331 fermentation fluid

    转速/
    (r·min–1)
    rotation speed
    产孢量×108/
    (CFU/mL)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    24 h48 h
    12013.370.31±5.05 aA77.04±4.27 aA
    15012.565.70±1.41 aA72.63±4.80 aA
    180 3.649.34±8.92 bB51.96±5.83 bB
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    表  5   不同装液量对菌株1331发酵液的影响

    Table  5   Effects of different medium volume on the strain 1331 fermentation fluid

    装液量/mL
    medium volume
    产孢量/
    (×108 CFU·mL−1L)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    24 h48 h
    8014.274.99±7.08 aA82.51±4.76 aA
    10013.370.43±2.33 aA79.17±8.55 aA
    120 6.655.32±3.70 bB67.94±8.73 bB
    150 5.252.73±7.15 cB60.07±5.70 cB
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    表  6   不同接种量对菌株1331发酵液的影响

    Table  6   Effects of different inoculation amount on the strain 1331 fermentation fluid

    接种量/%
    inoculation amount
    产孢量×108/
    (CFU·mL−1)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    24 h48 h
    514.576.00±3.04 aA84.29±6.13 aA
    1012.270.26±5.05 bA78.07±4.27 bA
    15 5.755.45±4.53 cB61.99±6.65 cB
    20 4.353.02±3.70 cB60.29±6.50 cB
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    表  7   不同培养时间对菌株1331发酵液的影响

    Table  7   Effects of different culture time on the strain 1331 fermentation fluid

    培养时间/d
    culture time
    产孢量/
    (×108 CFU·mL−1)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    24 h48 h
    5 7.559.35±3.05 dD67.37±5.29 dD
    610.765.88±6.72 bcBC73.29±5.25 bcBC
    714.468.23±5.91 bB75.60±5.14 bB
    811.977.66±2.21 aA82.62±3.42 aA
    9 8.463.69±3.43 cdCD69.95±3.22 cdCD
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    表  8   优化发酵条件的正交试验结果与分析

    Table  8   Results of orthogonal test of culture conditions

    试验号
    No.
    ABCDEF产孢量×109/
    (CFU·mL−1)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected
    mortality rate
    装液量/mL
    medium volume
    接种量/%
    inoculation amount
    培养时间/d
    culture time
    pH温度/℃
    temperature
    转速/(r·min−1)
    rotation speed
    11111111.6187.09±3.64
    21112221.5685.57±1.74
    31221121.3580.94±3.99
    41222211.1876.25±4.27
    52121211.1073.28±3.61
    62122121.4082.96±6.27
    72211221.3080.07±6.90
    82212111.5184.69±6.82
    K11.4251.4171.4951.3401.4671.350
    K21.3271.3351.2571.4131.2851.403
    R0.0970.0820.2370.0730.1820.053
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    表  9   正交试验结果的方差分析(产孢量)

    Table  9   Variance analysis of orthogonal test (sporulation)

    因素
    factors
    偏差平方和
    deviation
    squares
    自由度
    free
    degree
    F
    F ratio
    F临界值
    F critical
    value
    显著性
    conspicuousness
    A 1.9011 169.000161.000*
    B 1.3611 121.000161.000
    C11.28111 002.778161.000*
    D 1.0511 99.444161.000
    E 6.6611 592.111161.000*
    F 0.5511 49.000161.000
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    表  10   最优发酵工艺的效果验证

    Table  10   Validation of optimum fermentation process

    发酵工艺
    fermentation process
    产孢量/(×108 CFU·mL−1)
    sporulation
    校正死亡率/%
    corrected mortality rate
    初始发酵条件
    initial process
    13.279.54±5.51
    最优发酵条件
    optimum process
    16.888.97±1.67
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    表  11   菌株1331发酵液对南方根结线虫卵孵化的抑制作用

    Table  11   Inhibition eggs hatching of M. incongnita by the strain 1331 fermentation fluid

    时间/d
    time
    发酵液体积分数/%
    volumn fraction of fermented liquid
    孵化率/%
    hatching rate
    30 63.59±5.03 aA
    0.140.41±6.68 bB
    0.538.57±6.64 cB
    1 29.24±2.08 dC
    5 8.01±2.87 eD
    60 76.91±4.04 aA
    0.152.03±3.34 bB
    0.549.14±2.95 cB
    1 41.72±3.00 dC
    5 17.39±2.89 eD
    90 81.82±3.46 aA
    0.161.50±5.94 bB
    0.554.18±2.34 cB
    1 50.69±2.17 dC
    5 24.06±5.41 eD
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    表  12   菌株1331发酵液对南方根结线虫2龄幼虫的抑杀活性

    Table  12   Inhibitory activity of the strain 1331 fermentation fluid to the second-stage juveniles of M. incognita

    时间/h
    time
    发酵液体积分数/%
    volumn fraction of fermented liquid
    死亡率/%
    mortality
    rate
    校正死亡率/%
    corrected
    mortality rate
    24 00 dD0 dD
    566.73±5.10 cC66.73±5.10 cC
    1080.63±2.94 bB80.63±2.94 bB
    2092.06±4.07 aA92.06±4.07 aA
    48 03.56±0.39 dD0 dD
    576.86±5.76 cC76.01±5.76 cC
    1089.36±1.67 bB88.97±1.67 bB
    20100 aA100 aA
    72 06.35±0.34 dD0 dD
    584.04±4.46 cC82.95±4.46 cC
    1096.43±1.75 bB96.19±1.75 bB
    20100 aA100 aA
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表(12)
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出版历程
  • 通信作者:  胡先奇 xqhoo@126.com
  • 收稿日期:  2018-05-09
  • 修回日期:  2018-05-14
  • 网络首发日期:  2020-02-29

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