版纳微型猪近交系STRA8基因克隆及功能生物信息学分析
Cloning and Functional Bioinformatics Analysis of STRA8 Gene in Banna Mini-pig Inbred Line
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Keywords:
- STRA8 /
- Banna mini-pig inbred line (BMI) /
- bioinformatics
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STRA8基因(stimulated by retinoic acid gene 8)是生殖细胞有丝分裂转变为减数分裂前的特异性表达基因[1-3],它在精子发生过程中的减数分裂前期起重要作用[4-5]。STRA8基因的表达受视黄酸(retinoic acid, RA)诱导因素的影响[6]。RA对于脊椎动物的生殖是必需的[1-2, 6],它对睾丸的正常结构和功能起维护作用[4]。RA含量缺乏时,会导致精子发生停止和细精管退化[1, 3, 6],因此它对精子发生的过程和细精管的正常功能非常重要;若RA活性较低,则其无法发挥作用,使STRA8基因无法表达,导致雄性生殖细胞一直停滞在有丝分裂阶段而无法进入减数分裂前期,更无法形成生殖细胞,从而影响精子发生过程[7]。STRA8在减数分裂过程中行使转录因子功能[4],是减数分裂起始的调节蛋白,参与雌性胚胎期和雄性出生后生殖细胞的减数分裂起始过程[8-11],其表达是雄性和雌性生殖腺及正常精子发生过程的重要条件,直接关系到RA是否有效[3, 7, 10],对生殖细胞中的RA的转导起重要作用[2, 7, 12]。
版纳微型猪近交系(Banna Mini-pig Inbred Line,BMI)是基于云南省优良地方猪种——滇南小耳猪培育成功的世界上第一个猪近交系,因其具有很多其他猪种不具有的重要特征,且基因高度纯合、遗传背景清楚,生理学、解剖学和疾病发生机理等方面与人类极为相似,可以作为良好的人类异种移植的器官供体,对其深入研究具有重要的科研价值和应用前景[13-17]。本研究克隆了BMI STRA8基因,通过测序等方法确定了STRA8基因的核苷酸序列,然后分析了该基因的核酸序列特征;利用生物信息学和比较基因组学对STRA8蛋白质进行了功能分析;通过分析多种组织的mRNA表达谱确定其组织表达水平,进而明确其发挥功能的重要组织,为今后深入研究STRA8基因的功能提供了参考。
1. 材料与方法
1.1 试验动物
版纳微型猪近交系第29世代的成年公猪,屠宰取样,液氮速冻保存。
1.2 方法
1.2.1 RNA提取和cDNA合成
利用RNA提取试剂抽提各组织总RNA,用分光光度计测定纯度、浓度,选择合格的RNA反转录为第1链cDNA。
1.2.2 设计并合成PCR引物
根据在GenBank上下载的水牛、绵羊、犬、人、仓鼠和大鼠等物种的STRA8 mRNA序列,以及猪STRA8 mRNA序列(登录号:JQ965783)和猪EST序列,使用Oligo 7软件设计特异性引物F1/R1来扩增STRA8基因;设计F2/R2特异性引物进行荧光定量,并以GAPDH基因为内参[18],扩增的产物长度为183 bp。引物序列及扩增信息如表1。
表 1 STRA8引物序列及扩增片段信息Table 1. STRA8 primer sequence and amplified fragment information名称
name序列 (5′→3′)
primer sequences产物大小/bp
product sizeSTRA8-F1 TGTGGGGAAGGCTGACTGAA 1 316 STRA8-R1 ACAGCCCACTCCAAAACATC STRA8-F2 AAGTACATCTAGCCCCAGTTCCG 143 STRA8-R2 GAAGGTCCGGTTCCTGTTTGA 1.2.3 PCR体系及程序
PCR反应体系为:ddH2O 5.75 μL、2×GC Buffer Ι 12.5 μL、dNTP 4 μL、睾丸cDNA模板1.5 μL、上下游引物各0.5 μL及Ex Taq酶0.25 μL,总体系25 μL。运行程序的退火温度为60 ℃,扩增产物经电泳后测序。
1.2.4 生物信息学分析
利用DNAStar软件进行序列组装、CDS预测、蛋白序列推导,利用ProtParam tool程序(http://web.expasy.org/protparam)预测蛋白质的分子量(Mw)和等电点(pI)。利用软件及网站SOPMA程序(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=/NPSA/npsa_sopma.html)预测推导出STRA8蛋白质的二级结构,SMART程序(http://smart.embl-heidelberg.de)预测出功能域,ProtScale程序(http://web.expasy.org/cgi-bin/protscale/protscale.pl)预测出疏水性,TMHMM 2.0程序(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM)预测跨膜结构,SignalP 4.1程序(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)预测信号肽,PSORT Ⅱ程序(http://psort.hgc.jp/form2.html)进行亚细胞定位,NetPhos 3.1 Server程序(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)预测磷酸化位点、Protfun 2.2软件预测蛋白质功能。通过NCBI BLASTP程序(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi?PROGRAM=blastp&PAGE_TYPE=BlastSearch&LINK_LOC=blasthome)搜索其他物种的STRA8蛋白质序列,利用DNAStar软件中的MegAlign程序和Clustal X软件与BMI STRA8蛋白序列(KU705622)进行同源比对;基于多物种氨基酸比对结果,利用MEGA 5.2构建系统进化树。
1.2.5 STRA8基因组、mRNA分析
利用Ensembl (http://asia.ensembl.org/index.html?redirect=no)及NCBI网站(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)查找STRA8基因的外显子、内含子的数目、长度以及在基因组中的位置。
1.2.6 多组织荧光定量表达分析
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2. 结果与分析
2.1 STRA8基因PCR结果
以F1/R1为引物,睾丸组织cDNA为模板,扩增的STRA8产物片段长度为1 316 bp (图1)。
2.2 STRA8基因序列及氨基酸序列
测序后拼接出BMI STRA8基因的CDS区为1 101 bp,编码366个氨基酸,已提交至NCBI GenBank,mRNA登录号和氨基酸登录号分别为KU705622和AOC89040 (图2)。
2.3 STRA8蛋白质基本特性
BMI STRA8蛋白质的一级结构信息和理化性质结果见表2。
表 2 STRA8蛋白质理化特性Table 2. The physics and chemistry properties of STRA8一级结构特性
primary structure characteristics预测结果
prediction results编码的氨基酸数number of amino acids encoded 366 等电点number of amino acids encoded (pI) 4.52 分子量/ku the molecular weight (Mw) 41.06 分子式molecular formula C1793H2821N479O591S16 正电荷残基(Arg+Lys) positive charge residue 37 负电荷残基(Asp+Glu) negative charge residue 71 平均疏水性(GRAVY) average hydrophobicity −0.537 不稳定系数(II) coefficient of instability 61.78 脂肪系数(AI) coefficient of fat 79.18 2.4 STRA8蛋白质二级结构
无规则卷曲106个氨基酸,占全部氨基酸序列的28.96%;α-螺旋191个氨基酸,占全部氨基酸序列的52.19%;延伸链结构42个氨基酸,占全部氨基酸序列的11.48%;β转角27个氨基酸,占全部氨基酸序列的7.38%。
2.5 STRA8蛋白质功能域
STRA8蛋白质有1个HLH蛋白功能域(螺旋—环—螺旋蛋白质功能域),位于34~84 AA处。在氨基端有1个HLH结构域和1个卷曲螺旋区域,在羧基端有2个低复杂度区域,HLH结构域包括2个保守性较高的α螺旋区和1个袢环(loop),袢环长度不定。
2.6 STRA8蛋白质疏水性
STRA8蛋白质的N末端、C末端疏水值均小于0,表明两端均亲水,而在第213 AA处具有最大疏水值1.944,第162 AA处具有最小疏水−3.589。
2.7 STRA8蛋白质跨膜螺旋、信号肽及亚细胞定位
STRA8蛋白质无跨膜螺旋和信号肽。其主要定位在细胞核,概率为87%;其次定位在细胞质,概率为8.7%。
2.8 STRA8蛋白质磷酸化位点分析
共发现34个磷酸化位点,包括23个丝氨酸位点、8个苏氨酸位点,3个酪氨酸位点(表3)。
表 3 预测的BMI STRA8蛋白质磷酸化位点Table 3. The prediction results of BMI STRA8 protein phosphorylated sites磷酸化氨基酸phosphorylated
amino acids位置position 分值score 位置position 分值score 位置position 分值score 丝氨酸serine 4 0.525 11 0.605 35 0.997 48 0.533 91 0.649 101 0.991 111 0.503 118 0.962 121 0.700 129 0.971 172 0.547 204 0.604 205 0.638 231 0.803 241 0.567 259 0.994 263 0.995 267 0.957 276 0.903 291 0.615 300 0.988 303 0.760 306 0.973 苏氨酸threonine 42 0.641 61 0.775 81 0.683 193 0.548 223 0.897 277 0.702 301 0.681 360 0.601 酪氨酸tyrosine 109 0.933 113 0.632 186 0.936 2.9 STRA8功能分析
Protfun 2.2预测结果(表4)显示:STRA8蛋白在复制和转录过程中发挥作用的可能性最大,概率达0.362。其次,在调节功能、转录、转录调节、中间代谢中枢等过程中发挥作用的可能性也较大。可见,此蛋白可能在复制和转录等方面具有重要作用。
表 4 STRA8功能预测Table 4. Prediction of STRA8 function功能分类functional category 概率probability 氨基酸合成amino acid biosynthesis 0.072 辅因子生物合成biosynthesis of cofactors 0.059 细胞被摸cell envelope 0.036 细胞过程cellular processes 0.031 中间代谢中枢central intermediary metabolism 0.144 能量代谢energy metabolism 0.032 脂肪酸代谢fatty acid metabolism 0.016 嘌呤和嘧啶purine and pyrimidine 0.171 调节功能regulatory functions $\geqslant$ 0.268复制和转录replication and transcription 0.362 翻译translation 0.115 转运和结合transport and binding 0.017 基因本体分类gene ontology category 概率probability 信号转导signal transducer 0.087 接收器receptor 0.003 激素hormone 0.001 结构蛋白structural protein 0.001 转运transporter 0.025 离子通道ion channel 0.011 电压门控离子通道voltage-gated ion channel 0.004 阳离子通道cation channel 0.010 转录transcription $\geqslant$ 0.168转录调节transcription regulation 0.163 应激反应stress response 0.006 免疫反应immune response 0.010 生长因子growth factor 0.005 金属离子传输metal ion transport 0.009 2.10 STRA8蛋白质系统进化分析
BMI STRA8氨基酸序列与家犬(XP_005629800)、绵羊(XP_014950882)、水牛(XP_006079922)、人(XP_011514439)、仓鼠(XP_003508946)、大鼠(XP_006224926) 6个物种STRA8氨基酸序列经同源性比对后,构建的分子系统进化树(图3、4)。
2.11 STRA8基因组、mRNA分析
在Ensembl数据库中搜索STRA8基因组DNA,结果显示该基因位于猪18号染色体NC_010460.3的14861386~14880354位置,其全长18 968 bp,包含8个外显子和7个内含子(图5)。
2.12 STRA8 组织mRNA表达分析
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图 6 BMI STRA8基因多组织表达谱注:1.心;2.肝;3.脾;4.肺;5.肾;6.胃;7.脑;8.肌肉;9.十二指肠;10.结肠;11.精囊腺;12.前列腺;13.尿道球腺;14.睾丸;15.附睾;不同字母表示差异极显著(P<0.01)。Figure 6. The multi-tissue expression profile of BMI STRA8Note: 1. heart; 2. liver; 3. spleen; 4. lung; 5. kidney; 6. stomach; 7. brain; 8. muscle; 9. duodenum; 10. colon; 11. seminal vesicle; 12. prostate; 13. urethral ball glands; 14. testis; 15. epididymis; different letters mean extremely significant difference (P<0.01).3. 讨论
近年来对于STRA8基因的结构和功能的研究越来越深入[11],目前已有人、小鼠、山羊和鸡的研究报道[19-23],研究表明:STRA8基因在雄性和雌性动物的生殖生理中起重要作用,是生殖细胞有丝分裂转变为减数分裂前的特异表达基因。本研究采用的试验动物为BMI猪,采用电子克隆方式拼接出猪的STRA8基因序列,并设计引物,然后以BMI为试验材料进行了验证。
本研究克隆了猪STRA8基因的全长编码区序列1 316 bp,包括编码区1 101 bp;编码366个氨基酸,包含117个疏水性氨基酸、89个极性氨基酸、37个强碱性氨基酸、71个强酸性氨基酸。化学修饰是蛋白质翻译后加工的重要内容,糖基化和磷酸化是蛋白质化学修饰的两种主要方式,蛋白质磷酸化可以大大提高酶蛋白的活性,本研究发现BMI STRA8蛋白磷酸化位点共有34个,为以后的功能研究提供了参考。
蛋白质的结构是其发挥功能的基础。通过生物信息学分析获悉,BMI STRA8蛋白含有1个蛋白功能域HLH,HLH结构域是1个家族类转录因子,这类转录因子对脊椎动物和无脊椎动物发育过程中细胞的增殖、分化、生长以及细胞的生存起着重要的调控作用,该类转录因子能够形成同二聚体或者异二聚体,然后与下游目的基因调控区的DNA序列相结合,从而发挥转录调控作用[24-25]。在RA存在的情况下,HLH结构域可以开启精原细胞的减数分裂[19, 22]。在STRA8基因的二级结构中α螺旋占大多数,从而保证了STRA8蛋白的稳定性。预测结果表明:STRA8蛋白质是疏水性蛋白,通过分析氨基酸序列的亲/疏水性,从而预测蛋白质的跨膜区,这对预测蛋白是否为膜蛋白有重要意义。STRA8蛋白无信号肽序列,说明它属于非分泌性蛋白,主要在细胞质中发挥作用。STRA8蛋白无跨膜螺旋结构,说明它属于非跨膜蛋白。STRA8的功能分析显示该蛋白在复制和转录过程中发挥功能的可能性最大,在调节功能、转录、转录调节、中间代谢中枢等中发挥功能的可能性都较大,显著高于其他功能。可见,此蛋白可能在复制和转录等方面具有重要作用。
BMI与其他6个物种的STRA8蛋白序列相似性均在70%以上,说明STRA8基因在物种进化过程中保守性较高。系统进化树显示水牛与绵羊聚在一起,为一小类,这两者皆为牛科动物;然后和猪聚为一类,三者皆为偶蹄目;再与家犬聚为一类,四者都为哺乳纲动物;之后与人聚为一类,此5个物种皆为脊索动物门;中国仓鼠与大鼠聚为一类,两者皆为啮齿目;两个大的分支聚为一类,两类都为脊索动物门,符合系统进化树的分类标准。
STRA8基因在雌性和雄性成年动物的性腺中都有很高的表达[2]。在成年小鼠中,STRA8基因RNA的表达似乎被限制在睾丸中,且这个表达仅限于生殖细胞,而不是体细胞[4]。米美玲等[26]研究表明:STRA8基因仅在成年小鼠的睾丸中表达;也有研究表明:STRA8基因表达仅限于减数分裂前成人睾丸的生殖细胞[1]。MIYAMOTO等[4]研究表明:人STRA8基因也仅在睾丸中表达。本研究对BMI实时荧光定量多组织表达谱分析表明:STRA8基因在性腺睾丸组织的表达量显著高于其他14种组织,在睾丸中的表达量是其他组织表达量的8~2 302倍,推断该基因主要在猪的睾丸中发挥重要功能。在生产实践中,公猪的繁殖力高低会直接影响其后代的数量和质量,精液品质是衡量公猪繁殖力高低的重要指标。而在近交系猪生产中,公猪的繁殖力直接影响近交系的继代繁育,因为近交系相互交配的公母猪要求有血缘上的高度近亲关系,与配母猪的公猪选择余地较小,一旦公猪繁殖力有问题,会直接影响某个亚系甚至家系的继代繁育。STRA8基因在BMI睾丸组织中高表达,表明该基因与精子生成有关。研究结果将为深入研究STRA8基因在猪中的功能提供重要依据。
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图 6 BMI STRA8基因多组织表达谱
注:1.心;2.肝;3.脾;4.肺;5.肾;6.胃;7.脑;8.肌肉;9.十二指肠;10.结肠;11.精囊腺;12.前列腺;13.尿道球腺;14.睾丸;15.附睾;不同字母表示差异极显著(P<0.01)。
Figure 6. The multi-tissue expression profile of BMI STRA8
Note: 1. heart; 2. liver; 3. spleen; 4. lung; 5. kidney; 6. stomach; 7. brain; 8. muscle; 9. duodenum; 10. colon; 11. seminal vesicle; 12. prostate; 13. urethral ball glands; 14. testis; 15. epididymis; different letters mean extremely significant difference (P<0.01).
表 1 STRA8引物序列及扩增片段信息
Table 1 STRA8 primer sequence and amplified fragment information
名称
name序列 (5′→3′)
primer sequences产物大小/bp
product sizeSTRA8-F1 TGTGGGGAAGGCTGACTGAA 1 316 STRA8-R1 ACAGCCCACTCCAAAACATC STRA8-F2 AAGTACATCTAGCCCCAGTTCCG 143 STRA8-R2 GAAGGTCCGGTTCCTGTTTGA 表 2 STRA8蛋白质理化特性
Table 2 The physics and chemistry properties of STRA8
一级结构特性
primary structure characteristics预测结果
prediction results编码的氨基酸数number of amino acids encoded 366 等电点number of amino acids encoded (pI) 4.52 分子量/ku the molecular weight (Mw) 41.06 分子式molecular formula C1793H2821N479O591S16 正电荷残基(Arg+Lys) positive charge residue 37 负电荷残基(Asp+Glu) negative charge residue 71 平均疏水性(GRAVY) average hydrophobicity −0.537 不稳定系数(II) coefficient of instability 61.78 脂肪系数(AI) coefficient of fat 79.18 表 3 预测的BMI STRA8蛋白质磷酸化位点
Table 3 The prediction results of BMI STRA8 protein phosphorylated sites
磷酸化氨基酸phosphorylated
amino acids位置position 分值score 位置position 分值score 位置position 分值score 丝氨酸serine 4 0.525 11 0.605 35 0.997 48 0.533 91 0.649 101 0.991 111 0.503 118 0.962 121 0.700 129 0.971 172 0.547 204 0.604 205 0.638 231 0.803 241 0.567 259 0.994 263 0.995 267 0.957 276 0.903 291 0.615 300 0.988 303 0.760 306 0.973 苏氨酸threonine 42 0.641 61 0.775 81 0.683 193 0.548 223 0.897 277 0.702 301 0.681 360 0.601 酪氨酸tyrosine 109 0.933 113 0.632 186 0.936 表 4 STRA8功能预测
Table 4 Prediction of STRA8 function
功能分类functional category 概率probability 氨基酸合成amino acid biosynthesis 0.072 辅因子生物合成biosynthesis of cofactors 0.059 细胞被摸cell envelope 0.036 细胞过程cellular processes 0.031 中间代谢中枢central intermediary metabolism 0.144 能量代谢energy metabolism 0.032 脂肪酸代谢fatty acid metabolism 0.016 嘌呤和嘧啶purine and pyrimidine 0.171 调节功能regulatory functions $\geqslant$ 0.268复制和转录replication and transcription 0.362 翻译translation 0.115 转运和结合transport and binding 0.017 基因本体分类gene ontology category 概率probability 信号转导signal transducer 0.087 接收器receptor 0.003 激素hormone 0.001 结构蛋白structural protein 0.001 转运transporter 0.025 离子通道ion channel 0.011 电压门控离子通道voltage-gated ion channel 0.004 阳离子通道cation channel 0.010 转录transcription $\geqslant$ 0.168转录调节transcription regulation 0.163 应激反应stress response 0.006 免疫反应immune response 0.010 生长因子growth factor 0.005 金属离子传输metal ion transport 0.009 -
[1] OULAD-ABDELGHANI M, BOUILLET P, DÉCIMO D, et al. Characterization of a premeiotic germ cell-specific cytoplasmic protein encoded by STRA8, a novel retinoic acid-responsive gene[J]. The Journal of Cell Biology, 1996, 135(2): 469. DOI: 10.1083/jcb.135.2.469.
[2] DONG R R, YANG S J, JIAO J, et al. Characterization of STRA8 in Southern catfish (Silurus meridionalis): evidence for its role in meiotic initiation[J]. BMC Molecular Biology, 2013, 14: 11. DOI: 10.1186/1471-2199-14-11.
[3] ZHOU Q, NIE R, LI Y, et al. Expression of stimulated by retinoic acid gene 8 (STRA8) in spermatogenic cells induced by retinoic acid: an in vivo study in vitamin A-sufficient postnatal murine testes[J]. Biology of Reproduction, 2008, 79(1): 35. DOI: 10.1095/biolreprod.107.066795.
[4] MIYAMOTO T, SENGOKU K, TAKUMA N, et al. Isolation and expression analysis of the testis-specific gene, STRA8, stimulated by retinoic acid gene 8[J]. Journal of Assisted Reproduction and Genetics, 2002, 19(11): 531. DOI: 10.1023/A:1020963919596.
[5] ZHANG Y N, ZUO Q S, LIU Z Y, et al. The induction effect of Am80 and TSA on ESC differentiation via regulation of STRA8 in chicken[J]. PLoS One, 2015, 10(11): e0140262. DOI: 10.1371/journal.pone.0140262.
[6] JIA W W, CHENG D, CHEN S, et al. Retinoic acid induces myoblasts transdifferentiation into premeiotic STRA8-positive cells[J]. Cell biology International, 2011, 35(4): 365. DOI: 10.1042/CBI20100610.
[7] ZHOU Q, LI Y, NIE R, et al. Expression of stimulated by retinoic acid gene 8 (STRA8) and maturation of murine gonocytes and spermatogonia induced by retinoic acid in vitro[J]. Biology of Reproduction, 2008, 78(3): 537. DOI: 10.1095/biolreprod.107.064337.
[8] CHEN W, JIA W W, WANG K, et al. Distinct roles for CBP and p300 on the RA-mediated expression of the meiosis commitment gene STRA8 in mouse embryonic stem cells[J]. PLoS One, 2013, 8(6): e66076. DOI: 10.1371/journal.pone.0066076.
[9] KRENTZ A D, MURPHY M W, SARVER A L, et al. DMRT1 promotes oogenesis by transcriptional activation of STRA8 in the mammalian fetal ovary[J]. Developmental Biology, 2011, 356(1): 63. DOI: 10.1016/j.ydbio.2011.05.658.
[10] ENDO T, ROMER K A, ANDERSON E L, et al. Periodic retinoic acid-STRA8 signaling intersects with periodic germ-cell competencies to regulate spermatogenesis[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2015, 112(18): E2347. DOI: 10.1073/pnas.1505683112.
[11] HOGARTH C A, EVANOFF R, SNYDER E, et al. Suppression of STRA8 expression in the mouse gonad by WIN 18446[J]. Biology of Reproduction, 2011, 84(5): 957. DOI: 10.1095/biolreprod.110.088575.
[12] WANG X Y, CHEN T F, SONG C Y, et al. Cloning and expression characteristics of the pig STRA8 gene[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2014, 5(7): 12480. DOI: 10.3390/ijms150712480.
[13] WANG P, HUO H L, WANG S Y, et al. Cloning, sequence characterization, and expression patterns of members of the porcine TSSK family[J]. Genetics and Molecular Research, 2015, 14(4): 14908. DOI: 10.4238/2015.October.18.56.
[14] ZENG R, ZENG Y Z. Molecular cloning and characterization of SLA-DR genes in the 133-family of the Banna mini-pig inbred line[J]. Animal Genetics, 2005, 36(3): 267. DOI: 10.1111/j.1365-2052.2005.01277.x.
[15] QIN C Y, WANG P, WANG S Y, et al. Complementary DNA cloning, sequence characterization and expression analyses of a novel gene MFN1 from Chinese Banna mini-pig inbred line (BMI)[J]. Research Journal of Biotechnology, 2014, 9(5): 1.
[16] HUO J L, WANG P, ZHAO Y, et al. Molecular cloning, mRNA expression and characterization of a novel FAIM1 gene from Chinese Banna mini-pig inbred line (BMI)[J]. Journal of Animal and Veterinary Advances, 2012, 11(8): 1080. DOI: 10.3923/java.2012.1080.1086.
[17] YU P, ZHANG L, LI S, et al. Screening and analysis of porcine endogenous retrovirus in Chinese Banna minipig inbred line[J]. Transplantation Proceedings, 2004, 36(8): 2485. DOI: 10.1016/j.transproceed.2004.07.055.
[18] 张霞, 曾日彬, 霍金龙, 等. 版纳微型猪近交系RNF4基因克隆、多组织qPCR表达及功能生物信息学分析[J]. 东北农业大学学报, 2017, 48(3): 24. DOI: 10.3969/j.issn.1005-9369.2017.03.004. [19] TANG F R, YAO X, ZHU H, et al. Expression pattern of Ngn3 in dairy goat testis and its function in promoting meiosis by upregulating STRA8[J]. Cell Proliferation, 2014, 47(1): 38. DOI: 10.1111/cpr.12077.
[20] YAO X, TANG F R, YU M, et al. Expression profile of Nanos2 gene in dairy goat and its inhibitory effect on STRA8 during meiosis[J]. Cell Proliferation, 2014, 47(5): 396. DOI: 10.1111/cpr.12128.
[21] BAO J Q, MA H Y, SCHUSTER A, et al. Incomplete cre-mediated excision leads to phenotypic differences between STRA8-iCre; Mov10/1lox/lox and STRA8-iCre; Mov10/1lox/Δ mice[J]. Genesis, 2013, 51(7): 481. DOI: 10.1002/dvg.22389.
[22] DESIMIO M G, CAMPOLO F, DOLCI S, et al. SOHLH1 and SOHLH2 directly down-regulate stimulated by retinoic acid 8 (STRA8) expression[J]. Cell Cycle, 2015, 14(7): 1036. DOI: 10.1080/15384101.2015.1007721.
[23] ANDERSON E L, BALTUS A E, ROEPERS-GAJADIEN H L, et al. STRA8 and its inducer, retinoic acid, regulate meiotic initiation in both spermatogenesis and oogenesis in mice[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2008, 105(39): 14976. DOI: 10.1073/pnas.0807297105.
[24] 韩为东, 赵亚力, 伍志强, 等. FHL2通过相互作用抑制Id2的功能活性[J]. 中国生物化学与分子生物学报, 2008, 24(9): 810. [25] 顾成磊, 伍志强, 孟元光, 等. Id2通过非HLH结构域促进MCF-7细胞的侵袭性[J]. 现代肿瘤医学, 2008, 16(12): 2043. DOI: 10.3969/j.issn.1672-4992.2008.12.001. [26] 米美玲, 杨蓓, 徐斯凡, 等. Stra8: 生殖细胞有丝分裂转变为减数分裂前特异表达的基因[J]. 中华男科学杂志, 2009, 15(1): 54. -
期刊类型引用(1)
1. 易志飞,付春,江纳,杨瑶君,肖开兴. 枯草芽孢杆菌表面活性素和伊枯草菌素的生物信息学分析. 基因组学与应用生物学. 2021(Z1): 2177-2200 . 百度学术
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