牦牛和黄牛PGRMC1基因的克隆及在繁殖相关组织中的表达比较研究
Cloning of PGRMC1 Gene and Comparative Analysis ofIts Expression in Tissues Related to Reproductionbetween Yak and Cattle
-
Keywords:
- yak /
- PGRMC1 gene /
- cloning /
- real-time quantitative PCR
-
猪繁殖与呼吸综合征(porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS)也称蓝耳病，是由PRRSV引起的一种以母猪流产和各年龄段猪呼吸障碍为主要特征的病毒性传染病[1-3]。PRRSV属尼多病毒目(Nidovirales)动脉炎病毒科(Arteriviridae)动脉炎病毒属(Arteriviridae)，单股正链RNA病毒，基因组全长为15.4 kb[4-5]。PRRSV基因组编码的结构蛋白有GP2a、2b (E)、GP3-5、GP5a、M和N蛋白，其中囊膜糖蛋白GP5，基质蛋白M和核衣壳蛋白N是主要结构蛋白[6]。1987年，该病首先在北美被发现，此后在世界范围内广泛传播，给养猪业带来了巨大损失[7]。PRRSV有多种临床表现，最主要的特征是对妊娠母猪生殖功能的影响，妊娠晚期流产、木乃伊胎数量增加等。自1996年中国首次报道PRRS以来，该病在中国长期流行，危害巨大，是影响中国养猪业的重大传染病之一[8]。
PRRSV的正确诊断对于其防控有重要意义。目前病毒的分离鉴定、反转录-聚合酶链式反应(reverse transcription-polymerase chain reaction, RT-PCR)及荧光定量PCR (fluorescent quantitative PCR, QPCR)是实验室常用的检测方法[9]。GOU等[10]利用反转录环介导等温扩增与垂直流核酸检测条结合，为PRRSV检测提供了一种通用方法。近年来，以PRRSV N蛋白为抗原的IDEXX ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)试剂盒已被广泛用来检测PRRSV抗体。以重组Nsp7蛋白作为抗原的ELISA抗体检测试剂盒也已研发，其检测结果与以PRRSV N蛋白为抗原的IDEXX ELISA符合率达到97.6%，并能用来区分1型和2型PRRSV[11]。此外，以原核表达PRRSV M和N蛋白制备的抗体检测试纸已被广泛应用[12]。LI等[13]用PRRSV N蛋白单克隆抗体标金制备PRRSV抗原检测试纸，成为有效的PRRSV临床检测工具。通过大肠杆菌表达系统制备Nsp7重组蛋白，经过亲和层析和分子筛层析纯化后标金制备PRRSV抗体检测试纸，为临床检测PRRSV感染、疫苗免疫效果及抗体消长规律提供有力保障[14]。
免疫过氧化物酶单层细胞试验(immunoperoxidase monolayer assay，IPMA)是基于抗原抗体特异性结合的原理，在感染PRRSV的细胞中加入抗PRRSV多抗血清，充分孵育后再加入标有辣根过氧化物酶的二抗以及催化显色反应的底物，产生的砖红色沉淀附着在细胞表面，使用普通光学显微镜即可观察和判读结果。另外，IPMA细胞板可提前制备并在4 ℃条件下长期保存，反应结果也可长期保存并随时观察分析，目前还未见商品化的PRRSV IPMA抗体检测试剂盒。因此，本试验建立了PRRSV IPMA检测体系，通过优化反应条件和检测的特异性、敏感性，为PRRSV的防控和检测提供新方法。
1. 材料与方法
1.1 主要试剂
DMEM高糖培养基、胰蛋白酶和AEC显色液购自索莱宝生物公司。胎牛血清购自Gibco。TRIzol试剂、反转录试剂盒和EX Taq酶购自TAKARA公司。PRRS X3 ELISA抗体试剂盒购自IDEXX公司。PRRSV抗体检测试纸由河南农科院免疫学重点实验室研发并惠赠。辣根过氧化物酶(horseradish peroxidase, HRP)标记的羊抗猪的二抗购自Jackson Immune Research公司。脱脂奶粉、甲醇等试剂均为国产分析纯。
1.2 病毒、血清与细胞
Marc-145细胞由本实验室冻存，PRRSV病毒HN07-1株(GeneBank登录号为：KX766378.1)由河南农科院动物免疫学重点实验室分离并惠赠。PRRSV多抗血清由本实验室制备保存。
猪圆环病毒2型(porcine circovirus type-2, PCV-2)、猪流行性腹泻病毒(porcine epidemic diarrhea virus, PEDV)、猪伪狂犬病毒(pseudorabies virus, PRV)、猪细小病毒(porcine parvovirus infection, PPV)和口蹄疫病毒(foot-and-mouth disease virus, FMDV) 多抗血清由本实验室保存，使用IDEXX PRRS X3 ELISA抗体检测试剂盒检测，结果显示繁殖与呼吸综合征抗体均为阴性。用于符合率试验的300份血清取自河南洛阳、驻马店、平顶山、登封和三门峡地区5家猪场(采样猪均大于两周龄)。
1.3 IPMA方法的建立
将Marc-145细胞接种于96孔板中，长满80%以上孔时接种PRRSV，加入2%胎牛血清的DMEM培养基(维持液)放置于CO2培养箱中继续培养，同时设置未接毒的对照组；弃去病毒液，用PBST洗涤细胞3次；用预冷的无水甲醇固定细胞，加入5%脱脂奶封闭过夜；加入抗PRRSV多抗血清稀释液，37 ℃放置40 min；用PBST洗涤细胞3次；加入HRP-山羊抗猪二抗稀释液，37 ℃放置40 min；用PBST洗涤细胞3次；加入AEC显色液室温下作用5 min，洗去显色液倒置显微镜下观察，并记录试验结果。
1.4 IPMA反应条件优化
首先，采用组织半数感染(TCID50)方法测定PRRSV的滴度。Marc-145细胞用PBS洗涤3次，胰蛋白酶消化4 min，加入含有10%胎牛血清的生长液终止消化，反复吹打，使其细胞单个分散；后用排枪分别加入96孔板中，次日观察细胞变化，若细胞达到80%时，即可接种PRRSV。将病毒液按10倍系列稀释为10−1~10−10共10个稀释梯度，并分别接种于长满单层Marc-145细胞的培养液中，每个稀释梯度接种8孔，100 μL/孔，并留8个不接毒的孔作为空白对照，培养5 d，记录各孔细胞病变情况，出现病变即为感染，及时记录感染结果，重复操作3次取平均值。根据Reed-Muench法计算TCID50。
为了确定最佳IPMA反应条件，对病毒的接种量、培养时间和抗体稀释比例进行了优化。分别用MOI=0.01、0.1、0.5和1的病毒接种细胞，分别使用稀释比例为1∶500、1∶1 000和1∶3 000的一抗孵育细胞，分别于PRRSV感染后12、24 、36 和48 h收获细胞来验证IPMA的检测效果。
1.5 IPMA敏感性检测
稀释PRRSV病毒，使病毒滴度分别为MOI=0.01、0.1、0.5和1，分别感染96孔长满底面积80%以上的Marc-145细胞板，使用1∶1 000稀释比例的一抗，PRRSV感染时间为24 h进行敏感性试验，同时设置未感染组作为对照。
1.6 IPMA重复性检测
按照1.3节方法让不同的操作者重复操作IPMA试验3次，病毒的接种量采用MOI=0.1，使用3份不同的PRRSV阳性血清和阴性血清作为一抗，一抗稀释比例均为1∶1 000，其他反应条件相同，检测IPMA试验的重复性。
1.7 IPMA特异性检测
分别使用PCV-2、PEDV、PRV、CSFV、FMDV和PPV多抗血清进行交叉反应试验，以检测该方法的特异性。即用病毒感染96孔长满底面积80%以上的Marc-145细胞板，1∶1 000稀释比例的多抗血清，PRRSV感染24 h后进行特异性试验，以PBS组作为阴性对照。
1.8 IPMA与反转录PCR符合率试验
为了验证IPMA对PRRSV检测的可靠性，使用IPMA和RT-PCR技术同时对中国河南洛阳、驻马店、平顶山、登封和三门峡地区5家猪场的300份血清进行检测比较。
参照NCBI上发布的HN07-1序列，利用NCBI在线引物设计软件Primer-Blast进行引物设计，上游引物为：5′-GCCAAATAACAACGGCAAGCA3′，下游引物为：5′-ATGAGTTGCTCCCGGGAAAG3′，扩增片段大小为332 bp。从PRRSV感染的细胞中提取总RNA，反转录合成cDNA。以转录产物为模版，使用EX Taq酶进行PCR扩增。反应程序为：95 ℃预变性5 min，95 ℃变性30 s，60 ℃退火1 min，72 ℃延伸50 s，共30个循环，72 ℃终延伸10 min。反应结束后4 ℃保存，加入5×核酸上样缓冲液，进行琼脂糖凝胶电泳检测，同时设置阴性对照。
1.9 IPMA、试纸条及ELISA符合率试验
为了进一步评价IPMA的准确性，将无特定病原体的仔猪接种HN07-1毒株，另外3只未感染的仔猪免疫接种细胞培养液作为对照。血液样本分别在免疫后0、7、14、21、28、35 d采集，同时进行PRRSV抗体检测试纸、IDEXX PRRS X3 ELISA检测及IPMA检测。IPMA反应采用最优化的反应条件，IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒、PRRSV抗体检测试纸按照其说明书进行操作。
2. 结果与分析
2.1 IPMA反应条件的确定
采用组织半数感染(TCID50)方法测得PRRSV的滴度为1×10−6.25/mL。病毒接种结果显示：PRRSV接种MOI=0.01、0.1、0.5、1感染细胞24 h后都能够看到砖红色，随着PRRSV滴度增加颜色也加深，经过摸索发现MOI=0.1的感染量最为合适(图1)。
![]()
图 1 不同感染复数的PRRSV感染细胞后IPMA检测结果Figure 1. IPMA results of cells infected with PRRSV of different multiplicity infection使用MOI=0.1的PRRSV感染细胞，使用一抗的稀释浓度为1∶500背景颜色较深，提示有非特异性结合现象产生。使用一抗稀释浓度为1∶1 000颜色适中，一抗稀释浓度为1∶3 000时背景颜色较浅。结果显示：一抗稀释比例1∶1 000结果最佳(图2)。
![]()
图 2 不同稀释比例的一抗处理细胞后的IPMA检测效果Figure 2. The detection effect of IPMA treated with different dilution ratios of primary antibody使用MOI=0.1的PRRSV感染细胞，使用稀释浓度为1∶1 000的一抗孵育细胞，摸索PRRSV感染细胞12、24、36和48 h后IPMA检测的着色效果。结果显示在24 h显色效果最佳，36 和48 h大部分细胞发生着色(图3)。
![]()
图 3 PRRSV感染细胞不同时间的IPMA检测效果Figure 3. IPMA detection effect of PRRSV infected at different time2.2 IPMA的敏感性
敏感性试验结果显示：随着PRRSV稀释比例不断增大，IPMA显色程度也发生相应变化，砖红色逐渐由深变浅，当使用MOI=0.01的病毒感染细胞仍可以使细胞发生着色(图1)，而阴性对照不着色，表明IPMA检测方法敏感性良好。
2.3 IPMA的重复性
不同的操作者重复操作IPMA试验3次，采用MOI=0.1的PRRSV感染细胞板，使用3份不同的PRRSV阳性血清和阴性血清作为一抗，一抗稀释比例均为1∶1 000，其他反应条件相同，结果发现IPMA试验的重复性良好。
2.4 IPMA的特异性
特异性试验结果显示：除了PRRSV血清的IPMA检测结果为阳性外，PCV-2、PEDV、PRV、CSFV、FMDV和PPV检测结果均为阴性，表明本试验建立的PRRSV IPMA检测方法具有良好的特异性。
2.5 IPMA与反转录PCR的符合率
IPMA检测的阳性血清样品再使用RT-PCR进行检测。图4显示：病毒阳性对照组及IPMA阳性样品中都能扩增到1条特异性条带，大小约为332 bp，PBS对照组无任何扩增产物。
![]()
图 4 RT-PCR检测结果注：M.分子量标准；1. PBS对照组；2~3. PRRSV阳性血清组。Figure 4. The results of reverse transcription PCRNote: M. the molecular weight standard；1. PBS control group；2-3 are PRRSV positive sera group.为了进一步检测IPMA的有效性和可靠性，用IPMA与RT-PCR对河南洛阳、驻马店、平顶山、登封和三门峡地区5家猪场送检300份样品进行检测，并统计阳性和阴性符合率。阳性符合率为86.9%；阴性符合率为95.2% (表1)。
表 1 IPMA与反转录PCR检测田间感染情况比较Table 1. Detection PRRSV antibodies at different days after PRRSV infection in pig farm usingIPMA and RT-PCRIPMA RT-PCR 阳性结果
positive results阴性结果
negative results总数
total阳性结果positive results 206 3 209 阴性结果negative results 31 60 91 总数total 237 63 300 2.6 IPMA、ELISA和试纸的符合率
将IPMA与IDEXX PRRS X3 ELISA抗体检测试剂盒及PRRSV抗体检测试纸3种检测方法进行比较，使用血清样本采集自HN07-1攻毒的实验猪。在攻毒前7 d采集血清，试纸条、 IDEXX PRRS X3 ELISA及IPMA检测结果均为阴性。攻毒后14 d，IPMA及IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒检测所有血清样本均为阳性，试纸条检测结果有2头猪为阳性，1头为阴性；感染后21 d，3种检测手段结果都为阳性(表2)。总之，IPMA与试纸条的符合率为17/18，即94%，IPMA与IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒符合率为18/18，即100%。
表 2 IPMA、IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒和试纸条3种检测方法比较Table 2. Detection PRRSV antibodies at different days after PRRSV infection using IPMA、IDEXX PRRS 3X ELISA kit and the test strip感染后时间/d
days post infection检测方法
methodsHN07-1 1 2 3 0 IPMA − − − ELISA 0 0 −(0.007) Strip − − − 7 IPMA − − − ELISA −(0.086) −(0.007) −(0.044) Strip − − − 14 IPMA + + + ELISA +(1.345) +(1.97) +(0.639) Strip + + − 21 IPMA + + + ELISA +(1.658) +(1.732) +(1.324) Strip + + + 28 IPMA + + + ELISA +(1.658) +(1.765) +(1.804) Strip + + + 35 IPMA + + + ELISA +(1.783) +(1.751) +(1.368) Strip + + + 3. 讨论
目前，IPMA在畜禽传染病领域已经被广泛应用。张振仓等[15]建立了CSFV的IPMA检测体系，并确定其具有良好的灵敏性和特异性，为CSFV检测方法的开发奠定基础。在PCV-1和PCV-2型检测中，建立的IPMA检测方法与ELISA检测结果符合率达86%以上[16]。PPV IPMA检测方法与ELISA及血凝试验的符合率分别为98%和96%[17]。在猪肠增生病检测方面，IPMA与间接荧光试验(indirect immuno fluorescence, IFA)的检测结果几乎一致[18]。
目前，IFA和ELISA常用来检测血清中抗体。IPMA和其他免疫学检测方法一样，是一种抗原抗体特异性结合的实验方法，具有特异强、敏感性高、操作简单、对设备要求不高、实验结果可以长期保存等特点。此检测仅需一台普通的光学显微镜，且实验所需试剂耗材成本低，这些特点使得此方法有利于在临床应用中长期推广，适用于流行病学调查。
在本研究中，通过对实验条件的优化最佳病毒接种量MOI值为0.1，最佳的病毒感染时间为24 h，一抗最佳稀释度为1∶1 000，所建立的PRRSV IPMA检测方法与其他几种临床流行猪病无交叉反应。对300份来自不同地区的临床血清进行检测，IPMA与PCR检测的阳性符合率达86.9%。将HN07-1攻毒的实验猪用IPMA与IDEXX PRRS X3 ELISA抗体检测试剂盒及PRRSV抗体检测试纸3种检测方法进行比较，IPMA与试纸条的符合率为94%，与IDEXX PRRS X3 ELISA试剂盒符合率为100%。研究结果表明：该方法具有良好的特异性和敏感性，有一定的应用和推广价值。但IPMA检测方法也有局限性，当PRRSV含量太低时不产生特异性的显色反应，其样本的阳性检出率比PCR和ELISA等检测方法略低，并且存在一定主观判断的偏差。综上所述，本研究建立了PRRSV的IPMA检测体系，优化并确定了该检测方法的最佳反应条件，为检测PRRSV的临床检测提供新工具。
-
![]()
图 1 PGRMC1 基因 PCR 产物电泳检测
注：M. DNA Marker DL2000; 1, 2. 牦牛PGRMC1基因; 3, 4. 黄牛PGRMC1基因; 5. 阴性对照。
Figure 1. Electrophoresis results of PGRMC1 PCR product
Note: M. DNA Marker DL2000; 1, 2. yak PGRMC1 gene; 3, 4. cattle PGRMC1 gene; 5. negative control.
![]()
图 2 牦牛与其他物种PGRMC1基因氨基酸序列比对
Figure 2. Amino acid sequence alignment of PGRMC1 gene between yaks and other species
![]()
图 3 PGRMC1基因氨基酸序列的系统发生树
Figure 3. The phylogenetic tree of yak PGRMC1 deduced amino acid
![]()
图 5 PGRMC1基因在牦牛和黄牛不同组织中的相对表达量(mean±SE)
注：1.下丘脑，2.垂体，3.卵巢，4.输卵管，5.子宫；相同字母代表差异不显著(P>0.05)，不同字母代表差异显著(P<0.05)。
Figure 5. The expression level of yak and cattle PGRMC1 gene in different tissues (mean±SE)
Notes: 1. hypothalamic, 2. pituitaries, 3. ovaries, 4. oviducts, 5. uteri; The same letters represent the difference was not significant (P>0.05); different letters represent significant differences (P<0.05).
表 1 牦牛和黄牛PGRMC1基因克隆引物序列
Table 1 Primers used in PGRMC1 cloning of yak and cattle
基因 gene 引物序列(5'→3') primer sequences 扩增产物长度/bp product size 登录号 accession No. PGRMC1 F: GCCCAACCTTTGCTCCAG
R: CCCCTCGCATGTCCAATC1 404 NM_001075133 
下载: 导出CSV
表 2 PGRMC1基因定量引物序列
Table 2 PGRMC1 primers for qPCR
基因
gene引物序列(5'→3')
primer sequences扩增产物长度/bp
product sizePGRMC1 F: GCCCTATGGAGTCTTTGCTG
R: GAGGTCGGAAAGGTCATCGT103 GAPDH F: CACCCTCAAGATTGTCAGC
R: CTTCTGGGTGGCAGTGAT217
下载: 导出CSV
-
[1] FRIEL A M, ZHANG L, PRU C A, et al. Progesterone receptor membrane component 1 deficiency attenuates growth while promoting chemosensitivity of human endometrial xenograft tumors[J]. Cancer Letters, 2015, 356(2 Pt B): 434. DOI: 10.1016/j.canlet.2014.09.036.
[2] TERZAGHI L, TESSARO I, RAUCCI F, et al. PGRMC1 participates in late events of bovine granulose cells mitosis and oocyte meiosis[J]. Cell cycle, 2016, 15(15): 2019. DOI: 10.1080/15384101.2016.1192731.
[3] PELUSO J J, ROMAK J, LIU X. Progesterone receptor membrane component-1 (PGRMC1) is the mediator of progesterone’s antiapoptotic action in spontaneously immortalized granulosa cells as revealed by PGRMC1 small interfering ribonucleic acid treatment and functional analysis of PGRMC1 mutations[J]. Endocrinology, 2008, 149(2): 534. DOI: 10.1210/en.2007-1050.
[4] SCHUSTER J, KARLSSON T, KARLSTRÖM P O, et al. Down-regulation of progesterone receptor membrane component 1 (PGRMC1) in peripheral nucleated blood cells associated with premature ovarian failure (POF) and polycystic ovary syndrome (PCOS)[J]. Reproductive Biology and Endocrinology, 2010, 8: 58. DOI: 10.1186/1477-7827-8-58.
[5] MANSOURI M R, SCHUSTER J, BADHAI J, et al. Alterations in the expression, structure and function of progesterone receptor membrane component-1 (PGRMC1) in premature ovarian failure[J]. Human Molecular Genetics, 2008, 17(23): 3776. DOI: 10.1093/hmg/ddn274.
[6] ELASSAR A, LIU X, SCRANTON V, et al. The relationship between follicle development and progesterone receptor membrane component-1 expression in women undergoing in vitro fertilization[J]. Fertility and Sterility, 2012, 97(3): 572. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2011.12.026.
[7] ENGMANN L, LOSEL R, WEHLING M, et al. Progesterone regulation of human granulosa/luteal cell viability by an RU486-independent mechanism[J]. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 2006, 91(12): 4962. DOI: 10.1210/jc.2006-1128.
[8] PELUSO J J, PAPPALARDO A, LOSEL R, et al. Progesterone membrane receptor component 1 expression in the immature rat ovary and its role in mediating progesterone’s antiapoptotic action[J]. Endocrinology, 2006, 147(6): 3133. DOI: 10.1210/en.2006-0114.
[9] BISHOP C V, SATTERWHITE S, XU L, et al. Microarray analysis of the primate luteal transcriptome during chorionic gonadotrophin administration simulating early pregnancy[J]. Molecular Human Reproduction, 2012, 18(4): 216. DOI: 10.1093/molehr/gar073.
[10] KOWALIK M K, REKAWIECKI R, KOTWICA J. Expression and localization of progesterone receptor membrane component 1 and 2 and serpine mRNA binding protein 1 in the bovine corpus luteum during the estrous cycle and the first trimester of pregnancy[J]. Theriogenology, 2014, 82(8): 1086. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2014.07.021.
[11] LUCIANO A M, CORBANI D, LODDE V, et al. Expression of progesterone receptor membrane component-1 in bovine reproductive system during estrous cycle[J]. European Journal of Histochemistry, 2011, 55(3): e27. DOI: 10.4081/ejh.2011.e27.
[12] 高磊, 沈敏, 甘尚权, 等. 绵羊 PGRMC1 蛋白的cDNA克隆、序列分析及组织表达[J]. 农业生物技术学报, 2016, 24(1): 52. DOI: 10.3969/j.issn.1674-7968.2016.01.007 [13] PETERSEN S L, OTTEM E N, CARPENTER C D. Direct and indirect regulation of gonadotropin-releasing hormone neurons by estradiol[J]. Biology of Reproduction, 2003, 69(6): 1771. DOI: 10.1095/biolreprod.103.019745.
[14] ZI X D. Reproduction in female yaks (Bos grunniens) and opportunities for improvement[J]. Theriogenology, 2003, 59(5/6): 1303. DOI: 10.1016/S0093-691X(02)01172-X.
[15] SAMBROOK J, FRITSCH E F, MANIATIS T. Molecular cloning: a laboratory manual[M]. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989.
[16] CRUDDEN G, CHITTI R E, CRAVEN R J. Hpr6 (heme-1 domain protein) regulates the susceptibility of cancer cells to chemotherapeutic drugs[J]. The Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 2006, 316: 448.
[17] NEBERT D W, RUSSELL D W. Clinical importance of the cytochromes P450[J]. Lancet, 2002, 360(9340): 1155. DOI: 10.1016/S0140-6736(02)11203-7.
[18] MIN L, STRUSHKEVICH NV, HARNASTAI I N, et al. Molecular identification of adrenal inner zone antigen as a heme-binding protein[J]. The FEBS journal, 2005, 272(22): 5832. DOI: 10.1111/j.1742-4658.2005.04977.x.
[19] INTLEKOFER K A, PETERSEN S L. Distribution of mRNAs encoding classical progestin receptor, progesterone membrane components 1 and 2, serpine mRNA binding protein 1, and progestin and ADIPOQ receptor family members 7 and 8 in rat forebrain[J]. Neuroscience, 2011, 172: 55. DOI: 10.1016/j.neuroscience.2010.10.051.
[20] PELUSO J J, PRU J K. Non-canonical progesterone signaling in granulosa cell function[J]. Reproduction, 2014, 147(5): R169. DOI: 10.1530/REP-13-0582.
[21] SAINT-DIZIER M, SANDRA O, PLOYART S, et al. Expression of nuclear progesterone receptor and progesterone receptor membranecomponents 1 and 2 in the oviduct of cyclic and pregnant cows during the post-ovulation period[J]. Reproductive Biology and Endocrinology, 2012, 10: 76. DOI: 10.1186/1477-7827-10-76.
-
期刊类型引用(4)
1. 郎美玲，王大伟，谭凤春，孙爽，李雨欣，张淑辉，石玉祥，刘朋. PRRS流行病学与诊断检测技术研究进展. 现代畜牧兽医. 2024(11): 72-77 . 
百度学术
2. 李雷斌，李晓霞，王睿男，周智，刘玉良，赵柏林，孙航，冯冰，陈玲，王传彬，李义平，孙雨. PRRSV GP5和M抗原中和表位的融合表达与纯化以及间接ELISA检测方法的建立. 中国动物检疫. 2022(03): 71-79 . 百度学术
3. 朱海侠，陈雷，查代灿，张惠云，胡晓涵，包松英. 猪瘟病毒免疫过氧化物酶单层细胞试验检测方法的建立. 福建畜牧兽医. 2022(03): 8-11 . 百度学术
4. 李恒山. 猪繁殖与呼吸综合征的综合防治. 兽医导刊. 2021(21): 18-19 . 百度学术
其他类型引用(4)
计量
- 文章访问数: 1813
- PDF下载量: 20
- 被引次数: 8
