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PRRSV对IFN-γ及其关键信号分子mRNA转录的影响

闫晓霞, 曾梦颖, 张迪, 高洪, 严玉霖

闫晓霞, 曾梦颖, 张迪, 等. PRRSV对IFN-γ及其关键信号分子mRNA转录的影响[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2018, 33(3): 445-449. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201710022
引用本文: 闫晓霞, 曾梦颖, 张迪, 等. PRRSV对IFN-γ及其关键信号分子mRNA转录的影响[J]. 云南农业大学学报(自然科学), 2018, 33(3): 445-449. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201710022
Xiaoxia YAN, Mengying ZENG, Di ZHANG, et al. Effects of PRRSV on Transcription of IFN-γ and Its Key Signal Molecules[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2018, 33(3): 445-449. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201710022
Citation: Xiaoxia YAN, Mengying ZENG, Di ZHANG, et al. Effects of PRRSV on Transcription of IFN-γ and Its Key Signal Molecules[J]. JOURNAL OF YUNNAN AGRICULTURAL UNIVERSITY(Natural Science), 2018, 33(3): 445-449. DOI: 10.12101/j.issn.1004-390X(n).201710022

PRRSV对IFN-γ及其关键信号分子mRNA转录的影响

基金项目: 国家自然科学基金项目(31360599);云南省教育厅重点项目(2015Z098)
详细信息
    作者简介:

    闫晓霞(1990—),女,山西五台人,在读硕士研究生,主要从事实验室疫病检测。E-mail: 1404262839@qq.com

    通信作者:

    严玉霖(1979—),男,四川攀枝花人,博士,副教授,硕士生导师,主要从事传染病病理学研究。E-mail: yanyulin333@163.com

  • 中图分类号: S 852.651

摘要:
目的 为探讨猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)体外感染猪肺泡巨噬细胞(PAMs)后对IFN-γ及其关键信号分子IRF3和IRF7 mRNA转录的影响。
方法 从健康仔猪肺脏中无菌分离PAMs,分为对照组和 PRRSV组,于PRRSV感染后的6、12、24、48和60 h收集各组PAMs及其上清液,应用ELISA检测细胞培养上清液中IFN-γ的质量浓度和荧光定量 PCR检测不同组中PRRSVIFN-γIRF3IRF7的 mRNA转录情况。
结果 PRRSV组IFN-γ的质量浓度与正常对照组相比无显著性差异;与对照组相比,PRRSV组IFN-γ mRNA转录量在24 h和48 h显著升高(P<0.01)、48h后降低,IRF3P<0.05)和IRF7P<0.01)mRNA转录水平在60 h显著降低。
结论 PRRSV感染PAMs过程中对IFN-γ mRNA的转录呈现先抑制再激活后抑制的现象,在一定程度上是通过调控IRF3IRF7的转录水平来实现的。

 

Effects of PRRSV on Transcription of IFN-γ and Its Key Signal Molecules

Abstract:
Purpose In order to explore the effect of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) on the transcription of IFN-γ and its key signaling molecules IRF3 and IRF7 in porcine alveolar macrophages (PAMs) in vitro.
Method The PAMs were isolated aseptically with lavation from piglet and divided into control group, PRRSV group and cultured in vitro. The PAMs and its culture supernatant were collected respectively at different time points (6, 12, 24, 48 and 60 h) after PRRSV infection. Using ELISA to determine the changes of IFN-γ mass concentrations in the cell culture supernatant, and the mRNA transcription of PRRSV, IFN-γ, IRF3 and IRF7 were analyzed by real-time PCR.
Result There was no significant difference of the mass concentrations of IFN-γ protein between PRRSV group and normal control group. Compared with the control group, IFN-γ mRNA transcription in PRRSV group significantly increased at 24 h and 48 h (P<0.01), decreased after 48 h,IRF3 (P<0.05) andIRF7 (P<0.01) mRNA transcription level significantly reduced at 60 h.
Conclusion The results indicated that the transcription level of IFN-γ mRNA during PRRSV infection with PAMs showed a first inhibition of re-activation after the suppression by regulating IRF3 and IRF7 transcription level to a certain extent.

 

  • 猪繁殖与呼吸综合征(porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)引起的一种猪病毒性传染病,患病的怀孕母猪发生流产、死胎、木乃伊胎等繁殖障碍,其他年龄段的猪感染该病毒后出现严重的呼吸系统疾病[1-2]。由于 PRRSV具有易变异、抗体依赖性增强(antibody dependent enhancement,ADE)和免疫抑制等特点,全球养猪业以及猪肉的食品安全面临着严峻的挑战。PRRSV主要在猪肺泡巨噬细胞(porcine alveolar macrophages,PAMs)中复制繁殖[3],因此,PAMs在PRRSV的研究中具有关键作用。

    干扰素(interferon,IFN)是一类抗病毒细胞因子,在病毒感染早期,干扰素由病毒诱导细胞产生,具有较强保护力。根据分子结构、免疫原性和受体特异性的不同可将IFN分为I型、II型和III型,其中干扰素调节因子3 (interferon regulation factors 3,IRF3)和干扰素调节因子7 (interferon regulation factors 7,IRF7)在干扰素产生的信号通路中发挥着关键作用。IFN-γ作为先天性和适应性免疫反应的重要介质,能够清除外来病原体及肿瘤。 IFN-γ具有抗病毒作用,同时还能介导巨噬细胞活化,增加其吞噬作用,促进促炎细胞因子产生、增加微生物活性氧以及氮物质的产生,进而清除细胞内的病原体[4]。有研究发现:PRRSV感染宿主细胞后仅能检测到低水平的IFN-γ[5],而重组pIFN-γ不但能有效抑制PRRSV,同时还对免疫抑制猪具有良好免疫调节作用,增强疫苗的免疫效果[6]。因此,本试验就PRRSV云南株体外感染PAMs后对IFN-γ及其信号分子mRNA转录量的变化进行检测,旨在为PRRSV的免疫抑制机制和防控提供理论依据和技术支持。

    TCID50为105.06 mL−1的PRRSV云南株YN-2011由本实验室分离纯化保存(登录号:JX857698)[7]

    PAMs从健康仔猪肺脏中分离得到[8]

    将分离的PAMs以2×106 mL−1的密度铺在6孔板于37 ℃、5% CO2培养。将培养的PAMs分为对照组和PRRSV组,PRRSV组加PRRSV病毒悬液100 μL,对照组加等量的1640培养液。分别在感染后的6、12、24、48、60 h收集 PAMs及其上清液,−80 ℃保存,每组设3个重复。

    按照Swine IFN-γ ELISA Kit试剂盒说明书进行样品的处理和检测。

    采用TRIzol提取各组细胞总RNA,按照PrimeScriptTM RT reagent Kit with gDNA Eraser试剂盒说明将RNA逆转录成cDNA,并以其为模板,利用本实验室建立的 qPCR 进行检测。引物由上海生工合成(表1)。

    表  1  荧光定量PCR引物序列
    Table  1.  Real-tine PCR primer sequences
    基因gene 引物序列 primer sequence 退火温度/℃ T m 目的片段/bp fragment size
    β-actin F:5′-GATGAGATTGGCATGGCTTT-3′ 52 122
    R:5′-CACCTTCACCGTTCCAGTTT -3′
    PRRSV F:5′-GTCAGACATCACTTTACCCCTAG-3′ 60 123
    R:5′-CTCCACAGTGTAACTTATCCTCC-3′
    IFN-γ F:5′-GGCCATTCAAAGGAGCATGG-3′ 60 147
    R:5′-AGTTCACTGATGGCTTTGCG-3′
    IRF-3 F:5′-GGTGCCTACACTCCTGG-3′ 60 105
    R:5′-GTGGTCCTCTGCTAAACG-3′
    IRF-7 F:5′-CGCCTCCTGGAAAACCAA-3′ 60 76
    R:5′-CCCTGAGTTGTCCTGCAACA-3′
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    所有数据用“mean±SD”表示,应用SPSS 17.0软件进行单因素方差分析。

    图1显示:正常组贴壁的PAMs呈圆形,细胞质丰富;PRRSV感染组的PAMs在24 h可见细胞变圆、聚集,并随着时间的延长最后出现脱落、悬浮、崩解、破碎和死亡。

    图  1  24 h各组细胞的观察(200×)
    Figure  1.  PAMs in different treatment groups for 24 h under inverted microscope

    检测不同时间点PAMs上清液中IFN-γ的质量浓度(图2)可知:PRRSV组IFN-γ的质量浓度与对照组相比无显著性差异。PRRSV组IFN-γ的生成量在6~48 h逐渐升高,48 h达到最大值,6 h时IFN-γ的质量浓度低于对照组。

    图  2  不同时间点不同处理IFN-γ质量浓度(ρ)变化
    Figure  2.  The change of IFN-γ mass concentrations at different time points

    图3可知:PRRSV组PRRSV的mRNA转录水平在感染后的6~24 h逐渐升高,48 h时转录水平有所下调,60 h时再次升高。

    图  3  PRRSV mRNA转录水平
    注/Note: **. P<0.01。
    Figure  3.  The transcription levels of PRRSV mRNA

    图4可知:PRRSV组IFN-γ的mRNA转录量在感染后6~48 h逐渐升高,48 h时达到最大值,在6 h时IFN-γ mRNA转录水平显著低于正常对照组,24、48 h时显著高于对照组IFN-γ mRNA转录水平,到60 h又恢复到正常对照组水平。

    图  4  IFN-γ mRNA在各组不同时间点的转录水平
    注/Note: **. P<0.01。
    Figure  4.  The transcription levels of IFN-γ mRNA in each group at different time points

    运用qPCR方法检测不同处理组IRF3IRF7 mRNA相对转录量。根据2−ΔΔCt可以得出对照组的数据为1。结果(表2)显示:PRRSV组中IRF3的mRNA转录量在6、12、24 h时低于正常对照组,48 h时转录水平高于正常对照组IRF3的 mRNA转录量,而到60 h时又显著低于正常对照组;PRRSV组IRF7的mRNA转录量在24 h时达到最大值且显著高于对照组,但在12、48、60 h时均显著低于正常对照组。

    表  2  IRF3IRF7 mRNA在各组不同时间点的转录水平
    Table  2.  The transcription levels of IRF3 and IRF7 mRNA in each group at different time points
    基因
    gene
    培养时间/h culture time
    6 12 24 48 60
    IRF3 0.56±0.055 0.62±0.165 0.97±0.014 1.12±0.082 0.49±0.155*
    IRF7 1.02±0.189 0.43±0.066** 1.48±0.246** 0.41±0.034** 0.55±0.038**
    注:与同一时间点的对照组比较,*.P<0.05,**.P<0.01。
    Note: Compared with control group at the same time, *.P<0.05, **.P<0.01.
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    图5所示:PRRSV组IFN-γIRF3IRF7 mRNA转录水平相关系数分别为|R|=0.96和|R|=0.04。根据|R|∈[0.1, 0.3)为弱相关,|R|∈[0.3, 0.5)为中等相关,|R|∈[0.5, 1.0]为强相关,得出IFN-γIRF3基因mRNA转录水平呈强正相关与IRF3基因呈正相关。

    图  5  PRRSV组IFN-γIRF3IRF7基因转录水平相关性分析
    Figure  5.  IFN-γ and IRF3 and IRF7 correlation with the transcription in PRRSV groups

    PRRSV感染机体后出现的免疫学症状与适应性免疫应答的低效表达有关。研究表明:由病毒诱导产生的特异性IFN-γ可作为细胞免疫功能评价的重要指标,用于病毒感染后宿主免疫机制的研究[9]。本研究运用qRT-PCR和ELISA检测PRRSV感染PAMs后对IFN-γ的影响发现:PRRSV组IFN-γ mRNA转录水平在24、48 h时显著高于对照组,这一结果与前人研究的用PRRSV感染从支气管肺泡灌洗液中分离得的细胞后,其IFN-γ表达水平高于感染前的表达水平的结果[10]相类似。但IFN-γ的生成量与对照组相比却无显著性差异。研究发现:不同毒力的PRRSV毒株诱导IFN-γ的能力存在差异[11]。PATRICIA等[10]和HAN等[12]的研究发现:PRRSV高致病性毒株刺激IFN-γ生成的能力显著高于PRRSV经典毒株。IFN-γ主要是由活化的CD4+Th1 、CD8+T细胞产生,巨噬细胞产生IFN-γ的能力较弱。

    IRF3和IRF7是主要的抗病毒转录因子,无论机体通过何种模式识别受体或何种信号通路来识别病原体,最终均能活化IRF3和IRF7。研究发现:PRRSV的Nsp1、Nsp2、Nsp11、结构蛋白N和GP5蛋白可以通过不同的途径来抑制IRF3的产生,尤其对于猪肺泡巨噬细胞和单核细胞等易感细胞[13-15]。本研究运用qRT-PCR检测PRRSV感染PAMs后对IRF3IRF7的影响发现:PRRSV组中IRF3的mRNA转录水平随着感染时间的延长逐渐升高,但均低于对照组,IRF7mRNA转录水平在12、48、60 h时显著低于对照组,说明PRRSV体外感染PAMs后可抑制IRF3IRF7 mRNA转录水平。另外,本研究发现PRRSV组中IFN-γ mRNA转录水平与IRF3 mRNA转录水平存在强正相关关系,与IRF7 mRNA存在弱正相关关系。研究表明:IFN-γ能增加巨噬细胞的吞噬作用和促进MHCI及II类分子的表达,提高抗原递呈功能[16]

    本研究表明:PRRSV在感染PAMs过程中不刺激IFN-γ的分泌,但对IFN-γ mRNA的转录在24 h内抑制,后上调其转录水平,在60 h时又被抑制。

  • 图  1   24 h各组细胞的观察(200×)

    Figure  1.   PAMs in different treatment groups for 24 h under inverted microscope

    图  2   不同时间点不同处理IFN-γ质量浓度(ρ)变化

    Figure  2.   The change of IFN-γ mass concentrations at different time points

    图  3   PRRSV mRNA转录水平

    注/Note: **. P<0.01。

    Figure  3.   The transcription levels of PRRSV mRNA

    图  4   IFN-γ mRNA在各组不同时间点的转录水平

    注/Note: **. P<0.01。

    Figure  4.   The transcription levels of IFN-γ mRNA in each group at different time points

    图  5   PRRSV组IFN-γIRF3IRF7基因转录水平相关性分析

    Figure  5.   IFN-γ and IRF3 and IRF7 correlation with the transcription in PRRSV groups

    表  1   荧光定量PCR引物序列

    Table  1   Real-tine PCR primer sequences

    基因gene 引物序列 primer sequence 退火温度/℃ T m 目的片段/bp fragment size
    β-actin F:5′-GATGAGATTGGCATGGCTTT-3′ 52 122
    R:5′-CACCTTCACCGTTCCAGTTT -3′
    PRRSV F:5′-GTCAGACATCACTTTACCCCTAG-3′ 60 123
    R:5′-CTCCACAGTGTAACTTATCCTCC-3′
    IFN-γ F:5′-GGCCATTCAAAGGAGCATGG-3′ 60 147
    R:5′-AGTTCACTGATGGCTTTGCG-3′
    IRF-3 F:5′-GGTGCCTACACTCCTGG-3′ 60 105
    R:5′-GTGGTCCTCTGCTAAACG-3′
    IRF-7 F:5′-CGCCTCCTGGAAAACCAA-3′ 60 76
    R:5′-CCCTGAGTTGTCCTGCAACA-3′
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    表  2   IRF3IRF7 mRNA在各组不同时间点的转录水平

    Table  2   The transcription levels of IRF3 and IRF7 mRNA in each group at different time points

    基因
    gene
    培养时间/h culture time
    6 12 24 48 60
    IRF3 0.56±0.055 0.62±0.165 0.97±0.014 1.12±0.082 0.49±0.155*
    IRF7 1.02±0.189 0.43±0.066** 1.48±0.246** 0.41±0.034** 0.55±0.038**
    注:与同一时间点的对照组比较,*.P<0.05,**.P<0.01。
    Note: Compared with control group at the same time, *.P<0.05, **.P<0.01.
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出版历程
  • 通信作者:  严玉霖 yanyulin333@163.com
  • 收稿日期:  2017-10-25
  • 修回日期:  2018-03-16
  • 网络首发日期:  2018-04-30

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