铜锌复合胁迫对菜薹种子萌发、幼苗生长及子叶生理代谢的影响
Effects of Combined Copper and Zinc Stress on the Seed Germination, Seedling Growth and Cotyledon Physiological Metabolism of Chinese Flowering Cabbage
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滇姜花(Hedychium yunnanense)为姜科(Zingiberaceae)姜花属(Hedychium)植物，主要分布于中国的云南省、四川省、广西壮族自治区[1]，植物化学研究显示该植物主要包含二萜[2-5]、倍半萜[6-7]等成分，其中部分二萜化学成分显示细胞毒活性和抑制巨噬细胞中NO产生的活性，如本课题组在前期研究中发现滇姜花中二萜化合物hedychenoids B、hedychenone、villosin对肿瘤细胞SGC-7901的生长有抑制作用，化合物hedychenoids B、villosin对巨噬细胞中NO的产生有抑制作用[5]。近年来，作者揭示了多种姜科植物的化学成分及其活性[8-11]，为了继续进行该方面的研究，本研究对滇姜花根部的次生代谢产物进行了分离和鉴定，其研究结果将对滇姜花的合理开发和利用提供一定的数据支持。
1. 材料与方法
1.1 仪器与材料
试验样品于2013年采于云南省西双版纳州勐腊县，由中国科学院西双版纳热带植物园谭运红副研究员鉴定为滇姜花(H. yunnanense)。
质谱用API Qstar Pulsar型质谱仪测定；核磁共振谱用Bruker AM-400核磁共振仪测定，TMS为内标；HPLC为Agilent 1260液相色谱仪；薄层层析板和色谱硅胶由青岛海洋化工厂生产；MCI为日本三菱公司生产；TLC检测通过10%硫酸-乙醇溶液加热观察点样斑点。
1.2 提取与分离
干燥的滇姜花根5.0 kg，粉碎后用乙醇热提3次，减压蒸馏，得浸膏323 g；将浸膏分散于蒸馏水中，分别用乙酸乙酯、正丁醇萃取，回收溶剂，得乙酸乙酯部分170 g；用石油醚-丙酮(9∶1-1∶1)对乙酸乙酯部分进行硅胶柱色谱分离，梯度洗脱，得到6个部分(F1-F6)；对F3 (8 g)进行硅胶柱色谱[氯仿-丙酮(20∶1)]分离，得到4个部分F3.1-3.4，其中F3. 4再经硅胶柱色谱[石油醚-乙酸乙酯(8∶2)、氯仿-乙酸乙酯(9∶1)]分离，得到化合物1 (2 mg)、2 (2 mg)、3 (3 mg)；对F4 (13 g) 进行硅胶柱色谱[氯仿-乙酸乙酯(10∶1)]分离，得到5个部分F4.1-4.5，其中F4.2经硅胶柱色谱[石油醚-乙酸乙酯(1∶1)、石油醚-丙酮(3∶1)]分离，再经MCI纯化，得到化合物4 (3 mg)、5 (3 mg)、6 (4 mg)。化合物1~6结构如图1所示。
2. 结果与分析
化合物1：黄色粉末状固体。ESI-MS m/z: 329 [M+1]+。1H NMR (CDCl3, 400 MHz) δ 12.66 (1H, s, 5-OH), 8.07 (2H, d, J = 8.9 Hz, H-2′, 6′), 7.02 (2H, d, J = 8.9 Hz, H-3′, 5′), 6.44 (1H, d, J = 2.2 Hz, H-8), 6.35 (1H, d, J = 2.2 Hz, H-6), 3.90 (3H, s, 3-OCH3), 3.87 (3H, s, 7-OCH3), 3.86 (3H, s, 4′-OCH3); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 178.8 (s, C-4), 165.4 (s, C-7), 162.0 (s, C-5), 161.6 (s, C-4′), 156.7 (s, C-9), 155.9 (s, C-2), 138.8 (s, C-3), 130.1 (d, C-2′, C-6′), 122.8 (s, C-1′), 114.0 (d, C-3′, C-5′), 106.0 (s, C-10), 97.8 (d, C-6), 92.1 (d, C-8), 60.1 (q, 3- OCH3), 55.8 (q, 7- OCH3), 55.4 (q, 4′- OCH3)。以上数据与文献[12]报道的基本一致，故鉴定化合物1为5-羟基-3,7,4′-三甲氧基黄酮(5-hydroxy-3,7,4′-trimethoxyflavone)。
化合物2：黄色粉末状固体。ESI-MS m/z: 343 [M+1]+。1H NMR (CDCl3, 400 MHz) δ 7.94 (2H, d, J = 8.9 Hz, H-2′, 6′), 6.88 (2H, d, J = 8.9 Hz, H-3′, 5′), 6.34 (1H, d, J = 2.2 Hz, H-8), 6.18 (1H, d, J = 2.1 Hz, H-6), 3.98 (3H, s, -OCH3), 3.82 (3H, s, -OCH3), 3.77 (6H, s, -OCH3); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 173.6 (s, C-4), 163.4 (s, C-7), 160.7 (s, C-5), 160.4 (s, C-4′), 158.5 (s, C-9), 152.2 (s, C-2), 140.6 (s, C-3), 129.3 (d, C-2′, C-6′), 122.7 (s, C-1′), 113.5 (d, C-3′, C-5′), 109.0 (s, C-10), 95.3 (d, C-6), 92.0 (d, C-8), 59.4 (q, -OCH3), 56.0 (q, -OCH3), 55.4 (q, -OCH3), 55.0(q, -OCH3)。以上数据与文献[12]报道的基本一致，故鉴定化合物2为3,5,7,4′-四甲氧基黄酮(3,5,7,4′-tetramethoxyflavone)。
化合物3：黄色粉末状固体。ESI-MS m/z: 343 [M+1]+。1H NMR (CDCl3, 400 MHz) δ 7.82 (2H, d, J = 9.2 Hz, H-2′, 6′), 7.01 (2H, d, J = 9.2 Hz, H-3′, 5′), 6.81 (1H, s, H-5), 6.60 (1H, s, H-3), 3.98 (3H, s, 8-OCH3), 3.97 (3H, s, 6-OCH3), 3.93 (3H, s, 7-OCH3), 3.89 (3H, s, 4′-OCH3)； 13C NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 177.1 (s, C-4), 162.0 (s, C-4′), 161.2 (s, C-2), 157.5 (s, C-6), 154.6 (s, C-9), 152.5 (s, C-8), 140.4 (s, C-7), 127.8 (d, C-2′, 6′), 123.8 (s, C-1′), 114.5 (d, C-3′, 5′); 112.7 (s, C-10), 107.0 (d, C-3), 96.3 (s, C-5), 62.1 (q, 8-OCH3), 61.5 (q, 7-OCH3), 56.2 (q, 6-OCH3), 55.4 (4′-OCH3)。以上数据与文献[13]报道的基本一致，故鉴定化合物3为6, 7, 8, 4′-四甲氧基黄酮(6,7,8,4′-tetramethoxyflavone)。
化合物4：无色晶体。1H NMR (CDCl3, 400 MHz) δ 3.95 (3H, s, -OCH3), 7.03 (d, J = 8.5 Hz, 1H), 7.37-7.40 (2H, m), 9.82 (1H, s, -CHO); 13C NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 191.0 (d, -CHO), 151.7 (s, C-4), 147.1 (s, C-3), 129.8 (s, C-1), 127.6 (d, C-6), 114.4 (d, C-5), 108.7 (d, C-2), 56.1 (q, 3-OCH3); EIMS m/z: 152 (M+, 60), 151 (72), 81 (100)。以上数据与文献[14]报道的基本一致，故鉴定化合物4为4-羟基-3-甲氧基苯甲醛(4-hydroxy-3-methoxybenzaldehyde)。
化合物5：白色晶体。ESI-MS m/z: 155 [M+1]+。1H NMR (CDCl3, 400 MHz) δ 6.70 (1H, d, J = 8.8 Hz, H-5), 6.46 (1H, d, J = 2.4 Hz, H-2), 6.34 (dd, 1H, J = 8.8, 2.4 Hz, H-6), 3.79 (3H, s, -OCH3), 3.76 (3H, s, -OCH3);13C NMR (CDCl3, 100 MHz) δ 150.3 (s, C-1), 149.8 (s, C-3), 142.9 (s, C-4), 112.5 (d, C-5), 105.9 (d, C-6), 100.6 (d, C-1), 56.6 (q, -OCH3), 55.7 (q, -OCH3)。以上数据与文献[15]报道的基本一致，故鉴定化合物5为3,4-二甲氧基苯酚(3,4-dimethoxyphenol)。
化合物6：无色晶体。ESI-MS m/z: 209 [M+1]+。1H NMR (Acetone-d6) δ 8.27 (1H, s, OH), 7.69 (1H, d, J = 16.2 Hz, H-7), 7.42 (1H, d, J = 1.8 Hz, H-2), 7.24 (1H, dd, J = 1.8 和 8.2 Hz, H-6), 6.97 (1H, d, J = 8.2 Hz, H-5), 6.49 (1H, d, J = 16.2 Hz, H-8), 4.01 (3H, s, 9-OCH3), 3.82 (3H, s, -OCH3); 13C NMR (Acetone-d6) δ 167.1 (C-9), 149.3 (C-3), 147.9 (C-4), 144.9 (C-7), 126.6 (C-1), 123.1 (C-6), 115.3 (C-8), 114.7 (C-5), 110.5 (C-2), 55.5 (-OCH3), 50.7 (9-OCH3)。以上数据与文献[16]报道的基本一致，故鉴定化合物6为methyl ferulate。
3. 讨论
本研究从滇姜花根部中分得6个酚性化合物，经波谱分析和文献报道数据对照，鉴定所分离的6个化合物的结构分别为5-羟基-3,7,4′-三甲氧基黄酮(1)、3,5,7,4′-四甲氧基黄酮(2)、6,7,8,4′-四甲氧基黄酮(3)、4-羟基-3-甲氧基苯甲醛(4)、3,4-二甲氧基苯酚(5)、methyl ferulate (6)。其中化合物1~3为黄酮类化合物，以上化合物均为首次从该植物中分离得到。赵庆等[3, 13]发现滇姜花中多个二萜具有细胞毒活性，并且对滇姜花粗提物、滇姜花素A、姜花酮进行了动物体内抗肿瘤活性测试，结果表明它们均能显著性抑制小鼠体内移植性肿瘤H22的生长，其中滇姜花素A对小鼠H22肿瘤生长抑制率达54.27%，作用最强；李玉鹏等[5]发现滇姜花中部分二萜对NO产生有抑制作用。但是还没有文献报道该植物中酚性成分的分离和药理作用，本课题组将以上述物质为基础，进一步开展相关活性研究，为其合理开发提供依据。
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图 1 铜锌复合胁迫对菜薹子叶相对电导率的影响
注：小写字母为方差分析LSD法0.05水平上差异，大写字母为方差分析LSD法0.01水平上差异；下同。
Figure 1. Effects of combined copper and zinc stress on therelative conductivity in cotyledon of Chinese flowering cabbage
Note: Small and capital letters mean significant difference at 0.05 and 0.01 levels by LSD method, respectively; the same as below.
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图 2 铜锌复合胁迫对菜薹子叶POD、SOD和CAT活性的影响
Figure 2. Effects of combined copper and zinc stress on the POD, SOD and CAT activity in cotyledon of Chinese flowering cabbage
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图 3 铜锌复合胁迫对菜薹子叶氧负离子产生速率(O2−)的影响
Figure 3. Effects of combined copper and zinc stress on theO2− producing rate in cotyledon of Chinese flowering cabbage
表 1 不同浓度铜锌复合胁迫
Table 1 Combined stress of copper and zinc at different concentrations
处理 treatment 铜锌胁迫 stress of copper and zinc T1 (CK) 0 mmol/L Cu2+ + 0 mmol/L Zn2+ T2 0.20 mmol/L Cu2+ + 0.17 mmol/L Zn2+； T3 0.40 mmol/L Cu2+ + 0.34 mmol/L Zn2+； T4 0.80 mmol/L Cu2+ + 0.68 mmol/L Zn2+ T5 1.20 mmol/L Cu2+ + 1.02 mmol/L Zn2+ T6 1.60 mmol/L Cu2+ + 1.36 mmol/L Zn2+ T7 2.00 mmol/L Cu2+ + 1.70 mmol/L Zn2+ T8 2.40 mmol/L Cu2+ + 2.04 mmol/L Zn2+ 
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表 2 铜锌复合胁迫对菜薹种子萌发的影响
Table 2 Effects of combined copper and zinc stress on the seed germination of Chinese flowering cabbage
处理
treatment发芽势/%
germination energy发芽率/%
germination rateT1 55.67±3.79 bB 68.00±2.48 aA T2 60.00±4.97 aA 64.00±4.30 bB T3 50.67±5.17 cC 60.67±1.43 cC T4 45.33±3.79 dD 58.00±2.48 dC T5 40.00±2.48 eE 54.00±2.48 eD T6 31.33±3.79 fF 45.67±2.87 fE T7 25.00±2.48 gG 37.00±2.48 gF T8 18.00±4.97 hH 32.00±2.48 hG 注：小写字母为方差分析LSD法0.05水平上差异，大写字母为方差分析LSD法0.01水平上差异；下同。
Note: Small and capital letters followed the data mean significant difference at 0.05 and 0.01 levels by LSD method, respectively; the same as below.
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表 3 铜锌复合胁迫对菜薹幼苗生长的影响
Table 3 Effects of combined copper and zinc stress on the seedling growth of Chinese flowering cabbage
处理treatment 苗高/cm seedling height 最长根长/cm the longest root length 单株鲜重/mg fresh weight per plant T1 1.64±0.06 aA 2.99±0.30 aA 18.32±0.90 aA T2 1.41±0.03 bB 0.46±0.09 bB 13.88±0.62 bB T3 1.20±0.15 cC 0.31±0.03 cC 12.88±0.46 cC T4 1.24±0.02 cC 0.17±0.02 dD 12.18±0.14 dD T5 0.98±0.11 dD 0.12±0.06 deDE 10.89±0.51 eE T6 0.73±0.06 eE 0.11±0.03 deDE 7.35±0.63 fF T7 0.59±0.10 fF 0.09±0.01 eDE 6.27±0.57 gG T8 0.50±0.12 gF 0.04±0.01 eE 5.47±0.39 hH
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表 4 铜锌复合胁迫对菜薹子叶光合色素含量的影响
Table 4 Effects of combined copper and zinc stress on the photosynthetic pigment contents in cotyledon of Chinese flowering cabbage
处理
treatment叶绿素a/ (mg·g−1)
chlorophyll a叶绿素b/ (mg·g−1)
chlorophyll b总叶绿素/ (mg·g−1)
total chlorophyll类胡萝卜素 / (mg·g−1)
carotenoidT1 0.79±0.03 aA 0.20±0.03 aA 0.99±0.06 aA 0.19±0.01 aA T2 0.57±0.01 bB 0.11±0.01 bB 0.68±0.02 bB 0.16±0.00 bB T3 0.50±0.01 cC 0.08±0.00 cC 0.58±0.02 cC 0.15±0.01 cC T4 0.33±0.02 dD 0.07±0.02 cC 0.40±0.02 dD 0.10±0.01 dD T5 0.24±0.01 eE 0.07±0.01 cC 0.31±0.01 eE 0.07±0.00 eE T6 0.14±0.01 fF 0.04±0.01 dD 0.18±0.02 fF 0.05±0.01 fF T7 0.09±0.01 gG 0.02±0.01 eD 0.11±0.01 gG 0.04±0.01 gG T8 0.06±0.00 hH 0.03±0.01 eD 0.09±0.01 hH 0.02±0.00 hH
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表 5 铜锌复合胁迫对菜薹子叶可溶性蛋白质、可溶性糖、MDA和脯氨酸含量的影响
Table 5 Effects of combined copper and zinc stress on the protein, soluble sugar, MDA and proline contents in cotyledon of Chinese flowering cabbage
处理
treatment可溶性蛋白质/ (mg·g−1)
soluble protein可溶性糖/ (nmol·g−1)
soluble sugar丙二醛/ (nmol·g−1)
MDA脯氨酸/ (μg·g−1)
proline contentT1 12.79±0.46 bC 7.71±0.91 bB 18.97±0.96 dC 188.23±18.13 dD T2 12.85±0.50 bC 8.04±0.65 bB 16.47±3.34 eD 257.78±6.04 cC T3 12.67±1.16 bC 8.48±0.91 bB 16.53±1.01 eCD 361.77±12.54 bB T4 15.46±2.21 aA 11.24±1.29 aA 15.17±0.61 eD 452.96±11.81 aA T5 13.09±0.77 bBC 10.92±1.84 aA 22.45±3.47 cB 260.03±15.57 cC T6 14.48±0.56 aAB 8.54±2.17 bB 24.32±3.63 Bb 202.26±12.29 dD T7 12.86±1.98 bC 7.77±1.81 bB 27.27±1.61 aA 141.80±11.68 eE T8 12.58±1.16 bC 5.43±0.95 cC 28.04±2.58 aA 135.45±12.13 eE
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[1] 沈羽. 渐尖毛蕨对铜锌复合胁迫的生理响应[D]. 南京: 南京林业大学, 2014. [2] GUO L, CUTRIGHT T J. Remediation of AMD contaminated soil by two types of reeds[J]. International Journal of Phytoremediation, 2015, 17(4): 391. DOI: 10.1080/15226514.2014.910170.
[3] HUANG Z N, TANG Y K, ZHANG K X, et al. Environmental risk assessment of manganese and its associated heavy metals in a stream impacted by manganese mining in South China[J]. Human and Ecological Risk Assessment: An International Journal, 2016, 2(9): 3. DOI: 10.1080/10807039.2016.1169915.
[4] LIAO J B, WEN Z W, RU X, et al. Distribution and migration of heavy metals in soil and crops affected by acid mine drainage: public health implications in Guangdong Province, China[J]. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2016, 124: 460. DOI: 10.1016/j.ecoenv.2015.11.023.
[5] 钱海燕, 王兴祥, 蒋佩兰, 等. 黑麦草连茬对铜、锌污染土壤的耐性及其修复作用[J]. 江西农业大学学报, 2004, 26(5): 801. DOI: 10.13836/j.jjau.2004183 [6] 王广林, 张金池, 王丽, 等. 铜、锌胁迫对丁香蓼生理指标的影响[J]. 南京林业大学学报, 2009, 33(4): 43. DOI: 10.3969/j.issn.1000-2006.2009.04.009 [7] 王丽红, 赵艳晓, 周青. 铜、锌对3种常见乔木抗氧化指标的复合影响[J]. 城市环境与城市生态, 2013, 26(6): 6 [8] 朱志国, 周守标. 铜锌复合胁迫对芦竹生理生化特性、重金属富集和土壤酶活性的影响[J]. 水土保持学报, 2014, 28(1): 279. DOI: 10.13870/j.cnki.stbcxb.2014.01.054 [9] 韩文炎, 许允文. 铜与锌对茶树生育特性及生理代谢的影响[J]. 茶叶科学, 1996, 16(2): 99. DOI: 10.13305/j.cnki.jts.1996.02.005 [10] 申晓慧, 郭伟, 冯鹏, 等. 铜-锌复合胁迫对凤仙花萌发及幼苗生长的影响[J]. 农业灾害研究, 2014, 4(5): 16 [11] ROSSI G, FIGLIOLIA A, SOCCIARELLI S, et al. Capability of Brassica napus to accumulate cadmium, zinc and copper from soil[J]. Acta Biotechnologica, 2002(1-2): 133. DOI: 10.1002/1521-3846(200205)22:1/2.
[12] NAVARI-IZZO F, QUARTACCI M F. Phytoremediation of metals: tolerance mechanisms against oxidative stress[J]. Minerva Biotecnologica, 2001, 13(2): 73.
[13] RÍO CELESTINO M D, FONT R, FERNÁNDEZ-MARTÍNEZ J, et al. Field trials of Brassica carinata and Brassica Juncea in polluted soils of the Guadiamar river area[J]. Fresenius Environmental Bulletin, 2000, 9(5): 328.
[14] 杨志新, 刘树庆. 土壤重金属复合污染对油菜生长的影响[J]. 河北农业大学学报, 2000, 23(3): 27. DOI: 10.3969/j.issn.1000-1573.2000.03.008 [15] 邹文桐. 铅铜复合胁迫对芥菜子叶抗性的影响[J]. 西北农林科技大学学报, 2013, 41(11): 192. DOI: 10.13207/j.cnki.jnwafu.2013.11.023 [16] 郑光华. 种子活力的原理及其应用[M]// 北京植物生理学会. 植物生理生化进展(第四期). 北京: 科学出版社, 1986. [17] 邹文桐. 维生素C浸种对铅胁迫下宽杆芥菜毒害效应的影响[J]. 种子, 2011, 30(10): 95 [18] 张志良, 瞿伟菁. 植物生理学实验指导[M]. 3版. 北京: 高等教育出版社, 2003. [19] 张芬琴, 金自学. 两种豆科作物的种子萌发对Cd2+处理的不同响应[J]. 农业环境科学学报, 2003, 22(6): 660. DOI: 10.16590/j.cnki.1001-4705.2011.10.041 [20] 李合生. 植物生理生化实验原理和技术[M]. 北京: 高等教育出版社, 2000. [21] 朱广廉. 植物生理学实验[M]. 北京: 北京大学出版社, 1990. [22] 西北农业大学植物生理教研组. 植物生理学实验指导[M]. 西安: 陕西科学出版社, 1987. [23] 张志良. 植物生理学实验指导[M]. 北京: 高等教育出版社, 1990. [24] 王晶英. 植物生理生化实验技术与原理[M]. 哈尔滨: 东北林业大学出版社, 2003. [25] 王爱国, 罗广华. 植物的超氧物自由基与羟胺反应的定量关系[J]. 植物生理学通讯, 1990, 31(6): 57. DOI: 10.13592/j.cnki.ppj.1990.06.031 [26] CHEN Y X, HE Y F, LUO Y M, et al. Physiological mechanism of plant roots exposed to cadmium[J]. Chemosphere, 2003, 50(6): 789. DOI: 10.1016/S0045-6535(02)00220-5.
[27] 王俊, 郭颖, 吴蕊, 等. 不同种植年限和施肥量对日光温室土壤锌累积的影响[J]. 农业环境科学学报, 2009, 28(1): 92 [28] 甄泉, 严密, 杨红飞, 等. 铜污染对野艾蒿生长发育的胁迫及伤害[J]. 应用生态学报, 2006, 17(8): 1505. DOI: 10.13287/j.1001-9332.2006.0298 [29] 赵玉红, 蒙祖庆, 牛歆雨, 等. 铜锌胁迫对珠芽蓼珠芽萌发及生理生化特性的影响[J]. 草地学报, 2014, 22(1): 118. DOI: 10.11733/j.issn.1007-0435.2014.01.018 [30] PANLA K P, THOMPSON J E. Evidence for the accumulation of peroxidized lipids in membranes of senescing cotyledons[J]. Plant Physiology, 1984, 75(4): 1152. DOI: 10.1104/pp.75.4.1152.
[31] 杨红飞, 王友保, 李建龙. 铜、锌污染对水稻土中油菜(Brassica chinensis L.)生长的影响及累积效应研究[J]. 生态环境学报, 2011, 20(10): 1475. DOI: 10.16258/j.cnki.1674-5906.2011.10.021 [32] 孙赛初, 王焕校, 李启任. 水生维管束植物受镉污染后的生理生化变化及受害机制初探[J]. 植物生理学报, 1985, 11(2): 117 [33] 李淑艳, 郭微. Cu2+、Zn2+胁迫对黄瓜种子萌发及幼苗生长的影响[J]. 中国种业, 2006(1): 34 [34] 陈柳君, 冯海峰, 朱雪梅, 等. 铜锌复合污染对铜富集植物大聚藻抗氧化酶活性的影响[J]. 西北植物学报, 2014, 34(10): 2058. DOI: 10.7606/j.issn.1000-4025.2014.10.2056 [35] 孙天国, 沙伟, 刘岩. 复合重金属胁迫对两种藓类植物生理特性的影响[J]. 生态学报, 2010, 30(9): 2334 [36] 袁敏, 铁柏清, 唐美珍. 重金属单一污染对龙须草叶绿素含量和抗氧化酶系统的影响[J]. 土壤通报, 2005, 36(6): 930 [37] 黄五星, 高境清, 黄宇, 等. 商陆对镉锌铜胁迫的生理响应与金属积累特性[J]. 环境科学与技术, 2010, 33(1): 78. DOI: 10.3969/j.issn.1003-6504.2010.01.019 [38] 殷恒霞, 李霞, 米琴, 等. 镉、锌、铜胁迫对向日葵早期幼苗生长的影响[J]. 植物遗传资源学报, 2009, 10(2): 293. DOI: 10.13430/j.cnki.jpgr.2009.02.019 -
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1. 罗兴礼，彭伟，刘波，郑丽，殷发胜，陈业高. 小花姜花根茎的化学成分研究. 海南师范大学学报(自然科学版). 2024(02): 189-194 . 
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